Асе́птика - комплекс мероприятий, направленных на предупреждение попадания микроорганизмов в рану.

Асептика обладает несомненными преимуществами перед антисептикой в смысле результатов лечения, а также потому, что при асептическом способе лечения ран не бывает отравлений, которые возможны при применении некоторых антисептических средств.

Основное правило асептики заключается в том, чтобы все, что соприкасается с раной, было стерильно, т. е. надежно обеззаражено, свободно от жизнеспособных бактерий.

Стерилизация - это освобождение объектов внешней среды от различных микроорганизмов с помощью физических и химических способов (обеззараживание, обеспложивание). Технология стерилизации включает следующие этапы: дезинфекция, очистка материала, помещение его в контейнеры и стерилизаторы, собственно стерилизация, оценка ее эффективности и хранение стерильного материала. Различают стерилизацию паровую (водяным паром поддавлением), воздушную (горячим воздухом) и газовую (стерилизующим газом), химическую, лучевую (ионизирующим излучением, ультрафиолетовыми лучами).

Паровой метод:

для стерилизации перевязочного материала, белья, инструментов:

2,1 АТМ (температура пара - 132,9° С) - 20 минут. 1,1 АТМ (температура пара - 120° С) - 45 минут (многоразовые шприцы, стекло).

для стерилизации резиновых изделий: 1,1 АТМ (температура пара - 120° С) - 45 минут (каждые 5 мин. продувка).

Воздушный метод:

Для стерилизации стекла, инструментов Сухожаровой шкаф (темп. воздуха - 180° С) - 60 мин. Сухожаровой шкаф (температура воздуха - 160° С) - 150 мин.

Растворами химических соединений (инструменты, эндоскопы): 6% перекись водорода - 6 часов; лизоформин 3000 8% - 1 час;

сайдекс 2% - 10 час; глутаровый альдегид 2,5% - 6 часов.

Газовый метод (стоматологические, хирургические инструменты, иглы для рефлексотерапии и т.д.): окись этилена; формальдегид

Операционное белье и материал (салфетки, бинты, перчатки, шовный материал и др.) стерилизуются и хранятся в специальных коробках-барабанах (биксы Шиммельбуша). Крупные биксы бывают двух типов: без фильтра (с боковыми отверстиями, перекрывающимися металлической лентой-поясом с натяжным замком) и с фильтром (с отверстиями в дне и крышке коробки, перекрытыми текстильными фильтрами - мадеполам, фланель и др.).

К перевязочному материалу относятся салфетки, марлевые шарики, тампоны, турунды, биксы; к операционному белью - халаты, простыни, полотенца, маски, шапочки, бахилы.

После подготовки перевязочный материал и операционное белье укладываются в биксы или в полотняные мешки. После стерилизации срокхранения перевязочного материал а и белья в биксах - 48 ч, в мешках - 24 ч (если они не вскрывались).

Неинфицированные инструменты моются проточной водой в течение 5 мин и замачиваются в теплых (до 50 °С) моющих растворах на 15-20 мин. Примерные составы моющих растворов: пергидроль 20 г, стиральный порошок 5 г, вода - 975 мл; 2,5% раствор перекиси водорода - 200 мл, стиральный порошок 5 г, вода - 775 мл. Инструменты моются в таком растворе ершиком и щетками, прополаскиваются теплой водой 5 мин и дистиллированной - 1 мин. Затем в суховоздушном стерилизаторе при температуре 85 °С высушиваются.

Инструменты, загрязненные гноем или кишечным содержимым, помещаются в эмалированные емкости с 0,1% раствором диоцида или 5% раствором лизола на 30 мин. Затем моются в этом же растворе щетками, ополаскиваются проточной водой и далее по изложенной методике для неинфицированных инструментов. Специальной обработке подвергаются инструменты, контактировавшие с анаэробной инфекцией (замочка на 1 ч в 6% растворе перекиси водорода с 0,5% раствором моющего средства, обмывание и кипячение в течение 90 мин, затем - по вышеизложенной методике.

Стерилизация шовного материала может быть проведена в заводских условиях гамма-излучением.

Ампулированные мотки кетгута, шелка, капрона и других нитей хранятся при комнатной температуре и используются при необходимости.

Льняные и хлопчатобумажные нити,лавсан, капрон стерилизуются в автоклаве. Шелк, капрон, лавсан, хлопок стерилизуют также по методу Кохера.

Кетгут стерилизуют после обезжиривания (замачивание в эфире на 24 ч) по методам Клаудиуса (с использованием раствора Люголя и 96% раствора спирта), Губарева (раствора Люголя), Ситковского (в 2% растворе йодида калия) и др.

Контроль за стерильностью медицинских изделий осуществляется бактериологическими лабораториями лечебно-профилактических учреждений и санэпидслужбы.

Классификация хирургического инструментария. Хранение инструментов. Подготовка инструментов к работе. Техника накрывания перевязочного стола в перевязочной. Контроль стерильности инструментов.

Хирургические инструменты можно разделить на инструменты общего назначения и специальные инструменты.

1. Для разъединения тканей : скальпели, ножи, ножницы, пилы, долота, остеотомы, кусачки и др. К режущим инструментам относятся также резекционные ножи, применяемые для разрезания плотных сухожильных тканей вблизи суставов, и ампутационные ножи.

2. Вспомогательные инструменты (расширяющие, фиксирующие и др.: пинцеты анатомические и хирургические; тупые и острые крючки; зонды; большие расширители раны (зеркала); корнцанги, зажимы Микулича и др.

3. Кровоостанавливающие : зажимы (типа Кохера, Бильрота, Холстеда, «Москит» и др.) и лигатурные иглы Дешана.

4. Инструменты для соединения тканей : иглодержатели разных систем с колющими и режущими иглами.

Используемые при манипуляциях хирургические инструменты должны быть стерильными.

Хирургические инструменты передают из рук в руки тупыми концами в сторону принимающего, чтобы режущие и колющие части не травмировали рук. При этом передающий должен держать инструмент за середину.

Большинство хирургических инструментов изготавливается из хромированной нержавеющей стали.

Обработка инструментов

Этап I - предстерилизационная подготовка. * Моют в проточной воде в течение 5 минут.* Замачивают в специальном моющем растворе при температуре 50?C на 15 – 20 минут. Моющий раствор: 0,5 % порошок, 1 л воды, перекись 3 %.* Моют в том же растворе щеткой. * Ополаскивают в течение 5 минут теплой водой. * Прополаскивают в дистиллированной воде 1 минуту.* Проба на порошок - фенолфталеиновая. * Проба на кровь - бензидиновая.

Этап II - укладка и подготовка к стерилизации. В сухожаровом шкафу: Помещают в металлические коробки, укладывая вертикально в один слой. Крышки от коробок стерилизуют рядом.В автоклавах: Заворачивают в вафельное полотенце в виде пакета и укладывают на металлический поднос или сетку.

Этап III - стерилизация. В сухожаровом шкафу стерилизуются инструменты, стеклянная посуда:* Укладывают на полки. * Включают подогрев. * Доводят до 80 – 85?C при открытой дверце. * Просушивают 30 минут. * Закрывают дверцу.* Доводят до 180 0 C. * Стерилизуют 1 час. * После снижения температуры до 70 – 75 0 C открывают дверцу.* Стерильным инструментом закрывают металлические коробки с инструментами крышкой. * Спустя 15 – 20 минут камеру разгружают.

В автоклаве стерилизуются инструменты, системы, перчатки. Инструменты: при 2 атм. - 20 минут, 132 є.

Этап IV - хранение стерильного материала. Хранят в отдельном помещении. Стерильность в биксах - 48 часов. Если инструменты, обернутые в материал, стерилизовались в биксах - 3 суток.

Перевязочная сестра получает список всех перевязок на день, устанавливает их очередность. В первую очередь перевязывают больных с гладким послеоперационным течением (снятие швов), затем с гранулирующими ранами. Убедившись в готовности перевязочной, сестра приступает к обработке рук.
Предварительно она надевает операционную форму, тщательно прячет волосы под косынку или шапочку, коротко подстригает ногти, надевает маску. После обработки рук сестра одевается. Она берет из бикса халат, не касаясь им краев бикса. Осторожно развернув его на вытянутых руках, она надевает его, завязывает тесемками рукава халата и прячет тесемки под рукав. Открывает биксы и завязывает сзади тесемки халата санитарка перевязочной. После этого сестра надевает стерильные перчатки и накрывает инструментальный стол. Для этого она достает из бикса стерильную простыню и стелет ее, сложенную вдвое, на инструментальный стол. Санитарка открывает стерилизатор, крючками извлекает из стерилизаторов сетки с инструментами, дав стечь воде, ставит осторожно сетки на угол инструментального стола, покрытого простыней. При стерилизации воздушным способом в крафт-бумаге медсестра должна выяснить предварительно дату стерилизации. Изделия, простерилизованные в крафт-бумаге, могут храниться не более 3-х суток.
Инструменты следует раскладывать в определенном порядке, который перевязочная медсестра выбирает сама. Обычно инструменты раскладывают на левой стороне стола, перевязочный материал - на правой стороне, в середине размещают специальные инструменты и дренажные трубки. Здесь же сестра ставит стерильные банки для новокаина, перекиси водорода, фурацилина. Правый угол сестра оставляет свободным для приготовления наклеек и повязок во время перевязки. Простыней, сложенной вдвое, сестра закрывает инструментальный стол. Подготовительная работа должна быть закончена к 10 ч

СТЕРИЛИЗАЦИЯ ПЕРЕВЯЗОЧНОГО МАТЕРИАЛА И БЕЛЬЯ а) Виды перевязочного материала и операционного белья.К перевязочному материалу относятся марлевые шарики, тампоны, салфетки, бинты, турунды, ватно-марлевые тампоны. Перевязочный ма­териал обычно готовят непосредственно перед стерилизацией, используя специальные приемы для предотвращения осыпания отдельных нитей марли. Для удобства подсчета шарики укладывают по 50-100 штук в мар­левые салфетки, а салфетки и тампоны связывают по 10 штук.Перевязочный материал повторно не используется и после приме­нения сжигается. К операционному белью относятся -хирургические халаты, просты­ни, полотенца, подкладные. Материалом для их изготовления являются хлопчатобумажные ткани. Операционное белье многократного примене­ния после использования проходит стирку,причем отдельно от других видов белья.б) Стерилизация Перевязочный материал и белье стерилизуют автоклавированием при стандартных режимах. Перед стерилизацией перевязочный материал и бельё укладывают в биксы. Существуют три основных вида укладки бикса: Универсальная укладка Обычно используется при работе в перевязочной и при малых опера­циях. Бикс условно разделяется на секторы, и каждый из них заполняет­ся определенным видом перевязочного материала или белья: в один сек­тор помещаются салфетки, в другой - шарики, в третий - тампоны и т. д. Целенаправленная укладка Предназначена для выполнения типичных манипуляций, процедур и малых операций. Например, укладка для трахеостомии, для катетеризации подключичной вены, для перидуральной анестезии и пр. В бикс укладывается все инструменты, перевязочный материал и белье, необ­ходимые для осуществления процедуры. Видовая укладка Обычно используется в операционных, где требуется большое коли­чество стерильного материала.. При атом в"один бикс укладывают, на­пример, хирургические халаты, в другой - простыни, в третий - сал­фетки и так далее., В небольших количествах используется перевязочный материал в упаковках, прошедший лучевую стерилизацию. Существуют и специаль­ные наборы операционного белья одноразового использования (халаты и простыни), изготовленного из синтетических тканей, также подвергших­ся лучевой стерилизации. СПОСОБЫ КОНТРОЛЯ СТЕРИЛЬНОСТИ Все действия-по обработке и стерилизации инструментов, белья и пр. подлежат обязательному контролю. Контролируют как эффективность - стерилизации, так и качество предстерилизационной подготовки. а) Контроль стерильности Все методы контроля стерильности делят на прямой и непрямые. ~ Прямым методом контроля стерильности является бактериологическое исследование: специальной стерильной палочкой проводят по сте­рильным инструментам (коже рук хирурга или операционного поля, опе­рационному белью и пр.), после чего помещают ее в стерильную пробирку и отправляют в бактериологическую лабораторию, где производят посев на различные питательные среды и таким образом определяют бактери­альную загрязненность. Бактериологический метод контроля стерильности является наибо­лее точным. Отрицательным моментом является длительность проведе­ния исследования: результат посева будет готов лишь через 3-5 суток, а использовать инструменты нужно непосредственно после стерилизации. Поэтому бактериологическое исследование проводится в плановом поряд­ке и по его результатам судят о методических погрешностях в работе ме­дицинского персонала или дефектах используемого оборудования. По су­ществующим нормативам, несколько различающимся для разного вида инструментария, бактериологическое исследование должно проводить­ся 1 раз в 7-10 дней. Непрямые методы контроля используются в основном при термичес­ких способах стерилизации и позволяют определить величину темпера­туры, при которой проводилась обработка, не давая точный ответ на при­сутствие или отсутствие микрофлоры. Преимущество непрямых методов в быстроте получения результата и возможности использования при каж­дой стерилизации.При автоклавировании в бикс обычно укладывают ампулу (пробирку) с порошкообразным веществом, имеющим температуру плавления в пре­делах 110-120°С. После стерилизации при открытии бикса сестра преж­де всего обращает внимание на эту ампулу: если вещество расплавилось, то материал (инструменты) можно считать стерильными. Если же нет - нагревание было недостаточным и пользоваться таким материалом нельзя - он нестерилен. Для подобного метода наиболее часто использу­ются: бензойаая кислота ((° плавл. - 120°С), резорцин (<; ° плавл. - 119°С), антипирин (1° плавл. - 110°С). Вместо ампулы в бикс можно по­местить термоиндикатор или максимальный термометр, по которым так­же можно определить, достигалась ли в процессе обработки необходимая температура.

9. Устройство автоклава.Техника стерилизации.

Принципиально каждый автоклав имеет рабочую камеру, па-рообразователь с манометром давления, нагревательный эле­мент, систему подачи пара, кран выпуска пара и предохрани­тельный клапан. Техника автоклавирования включает следующие действия:1. Заливание воды в парообразователь.2. Закладывание биксов в камеру автоклава.3. Нагрев воды до образования пара.4. Подъем давления в рабочей камере до 1 атм. и выпуск остаточного воздуха.5. Подъем давления до режима стерилизации.6. В процессе стерилизации следует учитывать следующие параметры: 1, 1 атм. - 121, 2°С - 60 мин., 1, 5 атм. - 126, 8°С - 45 мин., 2 атм. - 132, 9°С - 30 мин., 2, 2» - 135, ГС - 20 мин., 2, 4» - 137, 2°С - 15 мин.7. Выключение автоклава.8. Выпуск пара, снижение его давления в камере до нуля.9. Просушивание белья в течение 5 мин. при закрытой крышке.10. Открывание крышки, изъятие биксов, закрывание колец на барабанах.11. Выпуск воды из парообразователя.12. Просушивание автоклава. Закрытый бикс сохраняет стерильность находящихся в нём предметов в течение 72 часов.

10. Методы стерилизации оптических инструментов. Стерилизация оптических инструментов Основным методом стерилизации оптических инструментов, требую­щих наиболее щадящей обработки с исключением нагревания, является газовая" стерилизация. Этим способом обрабатываются все инструменты для проведения лапароскопических и торакоскопических вмешательств, что связано с их сложным устройством и дороговизной.При стерилизации фиброгастроскопов, холедохоскопов, -колоноско-пов возможно применение и холодной стерилизации с использованием химических антисептиков (этиловый спирт, хлоргексидин, сайдекс - двухкомпонентный препарат на основе глутарового альдегида).Следует особо отметить, что наилучшим способом профилактики кон­тактной инфекции является использование одноразового инструмента­рия, подвергшегося лучевой заводской стерилизации.

11. Шовный материал, классификация. Стерилизация шёлка, капрона.

СТЕРИЛИЗАЦИЯ ШОВНОГО МАТЕРИАЛА а) Виды шовного материала Существует достаточное разнообразие видов шовного материала. Шовный материал естественного и искусственного происхождения К шовному материалу естественного происхождения относятся шелк, хлопчато-бумажная нить и кетгут. Кетгут изготавливают из подслизистого слоя кишки круп­ного рогатого скота. Шовный материал искусственного происхождения в настоящее время представлен огромным количеством нитей, созданных из синтетических химических веществ: капрон, лавсан, фторлон, полиэстер, дакрон и пр. Рассасывающийся и нерассасывающийся шовный материал Рассасывающиеся нити используются для сшивания быстро сраста­ющихся тканей в тех случаях, когда не нужна высокая механическая прочность. Таким материалом сшивают мышцы, клетчатку, слизистые оболочки органов желудочно-кишечного тракта, желчных и мочевых путей. Классическим примером рассасывающегося шовного материала яв­ляется кетгут. Кетгутовые нити полностью рассасываются в организме через 2-3 недели. К синтетическим рассасывающимся материалам относятся дексон, викрил, оксцилон. Срокиих рассасывания примерно такие же, как у хро­мированного кетгута, но они обладают повышенной прочностью, чте по­зволяет использовать более тонкие нити. Все остальные нити (шелк, капрон, лавсан, полиэстер, фторлон, ме­таллические скрепки и пр.) являются нерассасывающимися - они ос­таются в организме больного на всю его жизнь. Травматический и атравматичесий шовный Материал В течение многих лет во время хирургической операции операцион­ная сестра непосредственноперед наложением шва вдевала соответству­ющую нить в разъёмное ушко хирургической иглы. Такой шовный мате­риал в настоящее время называют травматическим. В последние десятилетия широкое распространение получил атравматический шовный материал.Нить прочно в заводских условиях соединена с иглой и предназначе­на для наложения одного шва. Основным преимуществом: атравматического шовного материала является примерное соответствие диаметра нити диаметру иглы (при использовании травматического - толщина нити зна чительно меньше диаметра ушка иглы), таким образом нить практичес­ки полностью закрывает собой дефект в тканях после прохождения иглы. Несколько особняком стоят металлические скрепки, клеммы, клип­сы, изготавливаемые из нержавеющей стали, титана, тантала и других сплавов. б) Способы стерилизации, шовного материала В настоящее время основным способом стерилизации шовного материала является лучевая стерилизация в заводских условиях. Это в пол­ной мере касается атравматического шовного материала: игла с нитью помещается в отдельную герметичную упаковку, на которой указаны размеры и вид иглы (колющая или режущая), материал, длина и номер нити. Шовный материал стерилизуется и в упаковке поступаетв лечеб­ные учреждения. Классические способы стерилизации шелка (метод Кохера), кетгу­та (методы Ситковского в парах йода, Губарева и Клаудиуса в спирто­вом и водном растворах Люголя) в настоящее время практически остав­лена из-заих длительности, сложности и не всегда достаточной эффективности.В условиях стационара сейчас стерилизуются только капрон, лав­сан и металлические скрепки. Стерилизуют их кипячением или автоклавированием. После стерилизации или вскрытия упаковок после лу­чевой стерилизации шовный материал, можно хранить только в 96° этиловом спирте.

2. Роль Пирогова в развитии отечественной хирургии.

Николай Иванович Пирогов (1810- 1881) в 1828 г. окончил медицинский фа­ культет Московского университета и был направлен в Дерпт в Профессорский ин­ститут для подготовки к преподаватель­ской деятельности. В 1832 г_. Н. И. Пирогов защитил докторскую диссер­тацию «О перевязке брюшной аорты" . С 1836 г. Н. И. Пирогов заведовал хирургической клиникой в Дерптском университете. В 1841 г. он перешел, в Петербург в Медико-хирургическую академию, по его предложению была создана новая клиника госпиталь­ной хирургии и патологической_анатомии; он оставался на этой кафедре до 1856 г. Н. И. Пиротов писал: «...Никто еще не представил такого полного. изображения нормального положения органов, как я».Положение многих органов (сердца, желудка, кишок) оказалось во­все не таким, как оно представляется обыкновенно при вскрытиях, когда от давления воздуха и нарушения целости герметически закрытых поло­стей это положение изменяется до крайности». Значение научной деятельности Н. И. Пирогова заключается в созда­нии естественнонаучной основы хирургии и в преодолении в значительной мере эмпиризма. Н. И. Пирогов заложил фундамент новой науки хирурги­ческой анатомии. Он разработал способ костнопластического удлинения костей голени при вылущении стопы (1851), писал о резекции коленного сустава, о перерезывании ахилловой жилы и о пластическом процессе, происходящем при сращении, концов перерезанной жилы, о ринопла­стике.Велики заслуги Н. И. Пирогова в области обезболивания. Одним из первых в Европе, применив эфир во время операции, Н. И. Пирогов впервые в мире воспользовался эфирным наркозом при оказании помощи раненым на поле сражения в Салтах. Общеизвестна выдающаяся роль И. И. Пирогова в создании военно-полевой хирургии и разработке вопросов организаций воеино-медицинско-_ го дела. Н. И. Пирогов высказался за рассечение входного и выходного отверстий «при неудобствах транспорта раненых "и при недостатках тща­тельного присмотра за ними», отказался от ранних ампутаций при огне- стрельных ранениях конечностей с повреждением костей, рекомендовал «сберегательную хирургию», разработал и ввел в широкую практику мето­ды иммобилизации конечности (крахмальную, гипсовуюповязки). Н. И. Пирогов первый в России ввел гипсовую повязку. Многие стороны научной и клинической деятельности Н. И. Пирогова имели существенное влияние на последующее развитие медицины и сохранили свое значение для современной медицины: создание топографической и хирургической анатомии, введение в хирургическую практику эфирного наркоза, истолкование воспаления как реакции организма в целом, разработка учения о инфекционной природе раневого процесса, о действии антисеитиков.

12. Стерилизация хирургических инструментов.

СТЕРИЛИЗАЦИЯ ХИРУРГИЧЕСКИХ ИНСТРУМЕНТОВ а) Предстерилизационная подготовка Предстерилизационная подготовка складывается изобеззаражива­ния, мытья и высушивания. Ей подвергаются все виды инструментов.Вид и объем предстерилизационной обработки в недавнем прошлом определялся степенью инфицированности инструментов. Все процедуры предстерилизационной обработки обязательно выпол­няются в перчатках! Обеззараживание Непосредственно после использования инструменты погружаются в емкость с дезинфицирующими средствами (накопитель). При этом они дол­жны быть полностью погружены в раствор. В качестве дезинфицирующих средств используется 3% раствор хлорамина (экспозиция 40-6.0 минут) или 6% раствор перекиси водорода (экспозиция 90 минут). После обез­зараживания инструменты промываются проточной водой. Мыть ё Инструменты погружаются в специальный моющий (щелочной) ра­створ, в состав которого входит моющее средство (стиральный порошок), перекись водорода и вода. Температура раствора 50-60°С, экспозиция 20 минут После этого инструменты моют щетками в том же растворе, а затем в проточной воде. Высушивание Высушивание может осуществляться естественным путем. В послед­нее время, особенно при последующей стерилизации горячим воздухом, инструменты сушат в сухожаровом шкафу при 80°С в течение 30 минут. После высушивания инструменты готовы к стерилизации. Выбор метода стерилизации в первую очередь зависит от вида хирур­гических инструментов. б) Собственно стерилизация Все хирургические инструменты по особенностям использованных материалов и других качеств можно условно разделить на три группы: металлические (режущие и нережущие), резиновые и пластмассовые, Оптические. Стерилизация нережущих металлических инструментов. Основным методом стерилизации является стерилизация горячим воздухом в сухожаровом шкафу или в автоклаве при стандартных режимах. Возможно также использование кипячения. Однако инструмен­ты после операций по поводу анаэробной"инфекции и в группе риска по гепатиту кипятить не рекомендуется. Некоторые виды простых инстру­ментов (пинцеты, зажимы, зонды и др.), предназначенные для одноразового использования, могут стерилизоваться лучевым способом. Стерилизация режущих металлических инструментов Проведение стерилизации режущих инструментов с помощью терми­ческих методов приводит ких затуплению и потере необходимых для хи­рурга свойств. Основным методом стерилизации режущих инструментов является холодный химический способ с применением растворов антисептиков. В последнее время в перевязочных режущие инструменты, как и не­режущие, стерилизуются в сухожаровом шкафу, что приводит к некото­рому снижению их остроты, но обеспечивает абсолютную стерильность. Самыми лучшими способами стерилизации являются газовая стерилизация и особенно лучевая стерилизация в заводских условиях. Последний метод получил распространение при использовании одноразовых лезвий для скальпеля и хирургических игл (атравматический шовный материал). Стерилизация резиновых и пластмассовых инструментов Основным методом стерилизации резиновых изделий является авто-клавирование. При многократной стерилизации резина теряет свои эластические свойства, трескается, что является некоторым недостатком ме­тода. Допустимо также кипячение резиновых изделий в течение 15 минут. Пластмассовые изделия разового использования, а также катетеры и зонды подвергаются лучевой заводской стерилизации. Особо следует сказать о стерилизации перчаток. В последнее время наи­более часто используются одноразовые перчатки, подвергшиеся лучевой заводской стерилизации. При многократном использовании основным ме­тодом стерилизации является автоклавирование в щадящем режиме: после предстерилизационной обработки перчатки высушивают, пересыпают тальком (предупреждает слипание), заворачивают в марлю, укладывают в бикс и автоклавируют при 1, 1 атм. в течение 30-40 минут или при 1, 5 атм.-15-20 минут.

9. Остановка сердца. Остановка сердца. Тяжелое осложнение, которое может наступить внезапно: пульс исчезает, тоны сердца не прослушиваются, дыхание прекращается, появляется резкая бледность. Зрачки расширены, мышцы расслаблены, рана перестает кровоточить. Необходимо, продолжая искусственное дыхание и обеспечив достаточное снабжение организма кислородом, немедленно, в первые 4 минуты приступить к массажу сердца. Существуют два метода: закрытый (непрямой) и открытый. Закрытый массаж сердца, быстрый и эффективный метод восстановления сердечной деятельности, осуществляется путем ритмичного толчкообразного надавливания на нижнюю треть грудины до 60 раз в минуту. При оказании помощи двумя врачами проводится 5 толчкообразных надавливаний на грудину на одно вдувание в легкие, при оказании помощи одним врачом - через каждые два быстрых вдувания в легкие проводится 15 толчкообразных надавливаний на грудину. При каждом толчке грудина должна приближаться к позвоночнику примернона 3-4 см, сердце сдавливается и кровь поступает в сосуды малого и большого круга кровообращения. В момент прекращения давления на грудину сердечные полости наполняются кровью. При закрытом массаже сердца больного необходимо уложить на твердую поверхность. Eсли закрытый массаж сердца эффективен - появляется пульс на периферических сосудах, сужаются зрачки, кожные покровы приобретают розовый оттенок. Открытый массаж сердца может производиться трансторакальным поддиафрагмальным и чрездиафрагмальным путем.

7. Способы обработки операционного поля. В последние годы для обработки операционного поля стали применять другие антисептические препараты: 1% раствор дегмина которым обильно смачивают тампоны и дважды обрабатывают им кожу; 05% раствор хлоргексидина (водно-спиртовой) которым обрабатывают кожу дважды с интервалом в 2 мин.
Рациональным заменителем спиртового раствора йода является йодонат - водный раствор комплекса поверхностноактивного вещества с йодом. Препарат содержит 45% йода. Для обработки операционного поля употребляют 1 % раствор для чего исходный йодонат разводят в 45 раза дистиллированной водой. Кожу дважды смазывают этим раствором перед операцией. Перед наложением швов на кожу ее обрабатывают еще раз. Смотри (4).

10. Осложнения при эндотрахеальном наркозе. ОСЛОЖНЕНИЯ ПРИ ЭНДОТРАХЕАЛЬНОМ НАРКОЗЕ Перед тем как изложить осложнения эндотрахеального наркоза необходимо напомнить виды гипоксий:Гипоксическая гипоксия. Само по себе название говорит о том что во вдыхаемом воздухе мало кислорода. Чаще всего она возникает тогда, когда мы мало даем кислорода в смеси. Чаще всего такая ситуация возникает при использовании закиси азота (идеальное максимальное соотношения 3 к 1), если анестезия недостаточна и анестезиолог увеличивает долю закиси азота более 80% то обязательно развивается гипоксическая гипоксия. В жизни гипоксическая гипоксия возникает при подъеме в горы. Гемическая гипоксия. Чаще бывает при массивной кровопотере, когда мало гемоглобина. Обычно лечится она переливанием крови и ИВЛ. Циркуляторная гипоксия. Чаще всего возникает при сердечно-сосудистой недостаточности, когда кровь не доходит до микроциркуляторного русла. Чаще всего это бывает при гипотензии, когда не поддерживается нормальное капиллярное давление и естественно кислород не доходит до клеток. Гистотоксическая гипоксия возникает при различных отравлениях. В анестезиологической практике это связано с передозировкой того или иного наркотического вещества. ОСЛОЖНЕНИЯ: Осложнения связанные с интубацией: Казалось бы, интубация простая процедура, но, к сожалению, есть ряд людей с особенностями анатомо-физиологического строения: плохо разгибается голова, плохо выводится челюсть, короткий надгортанник и при интубации даже в умелых руках не видна голосовая щель. И к сожалению, до сих пор часть больных погибает от неудачной интубации. В таких случаях необходимо позвать на помощь более опытного врача. Если не справится то необходимо выполнить трахеостомии., или можно спасти человека диффузионным дыханием: простой иглой прокалывают трахею, соединяют трубочку с иглой и потоком кислорода. Имеется ввиду, что даже если человека не дышит, мы ему обеспечиваем диффузию кислорода что безопасно в течение получаса. Так как оксигенация происходит хорошо, но углекислота накапливается в смертельной дозе через 30-40 минут. Повреждение языка, задней стенки глотки, зубов. Перегиб трубки. Ларингоспазм является осложнением любого вида анестезии. Ларингоспазм опасен во время вводного наркоза, иногда настолько плотно смыкаются голосовые связки, что невозможно провести трубку. В таких случаях самым эффективным является применение мышечных релаксантов т.к. именно скелетная мускулатура участвует в ларингоспазме. Любой ларингоспазм при введении миорелаксантов снимается, но нужно иметь ввиду, что больного сразу после интубации нужно быстро переводить на ИВЛ. Бронхоспазм возникает при сокращении гладкой мускулатуры на которую миорелаксанты не действуют, поэтому применяют бронхолитики начиная с эуфиллина. Фторотан обладает мощным бронхолитическим эффектом, что может использоваться даже при терапии бронхиальной астмы.

2. Консервирование и хранение крови.

ХРАНЕНИЕ КРОВИ Консервирование крови – это комплекс воздействий на нее, имеющих своей целью создание условий для длительного хранения крови вне организма в стерильном состоянии с максимальным сохранением ее биологических свойств (как форменных элементов, так и жидкой части крови).Для консервирования крови используются два метода:консервирование при положительных температурах;консервирование при отрицательных температурах. Хранение крови при положительных температурах обычно происходит в бытовых комнатных холодильниках.Они обеспечивают поддержание температурного режима в пределах от +2 до +4°С. При таких температурах можно хранить консервированную цельную кровь, эритроцитную массу, нативную плазму.Различные компоненты крови имеют разные сроки хранения. Так, например, эритроциты могут сохранять свои свойства в течение нескольких недель, а лейкоциты и тромбоциты – только несколько дней. Это объясняется тем, что лейкоциты и тромбоциты – ядерные клетки с более сложными функциями, а при длительном хранении в первую очередь изменения затрагивают ядро клетки. Срок хранения нативной плазмы ограничен тремя днями. Это обусловлено тем, что за это время инактивируется большая часть биологически активных веществ, входящих в ее состав.Для того чтобы избежать таких нежелательных последствий при длительном хранении крови, используется ее консервирование при отрицательных температурах. Это позволяет увеличить срок хранения крови за счет того, что обменные процессы в клетках в значительной степени подавляются, а это препятствует раннему их "старению".Для криоконсервирования используются следующие температурные режимы: умеренно низкие температуры (–40...–60°С), ультранизкие температуры (–196°С). Величиной температуры определяются сроки, в течение которых эритроциты смогут сохранить свои свойства. При умеренно низких температурах они могут храниться несколько месяцев, а при ультранизких – 10 и более лет. Консервирующие растворы. Для увеличения продолжительности сроков хранения крови вне организма используют специальные растворы – гемоконсерванты. В качестве обязательного компонента во все консервирующие растворы входят особые химические вещества – стабилизаторы. Широкое распространение в практической деятельности получили такие стабилизаторы как лимонная кислота и цитрат натрия. Они связывают ионы кальция, что способствует подавлению одного из этапов процесса гемостаза – образования тромбина. Важным свойством цитрата натрия является то, что через 20–30 мин после трансфузии крови, стабилизированной с его помощью, он почти полностью (не менее 90%) выводится из организма. Необходимо помнить о том, что при острой кровопотере или других состояниях (гипотермия) в результате введения стабилизированной цитратом натрия крови может возникнуть дефицит ионов кальция (см. гл. 9), поэтому после гемотрансфузии объемом в 500 мл надо внутривенно ввести 10 мл 10% раствора хлорида или глюконата кальция. Этого бывает вполне достаточно для восполнения возникающего дефицита кальция. К другой разновидности стабилизаторов относится гепарин. Он препятствует свертыванию крови, непосредственно связывая и инактивируя тромбин. Существенным недостатком гепарина при использовании его в качестве стабилизатора является то, что он не позволяет длительно сохранять консервированную с его помощью кровь, потому что по мере увеличения срока хранения происходит инактивация гепарина. В результате этого уже через сутки образуются мелкие, а через двое суток и крупные сгустки крови. Гепарин как консервант кроме самого гепарина (50 мг) содержит глюкозу (5 г), изотонический раствор хлорида натрия (до 100 мл). У этой смеси рН=7,3. Соотношение "раствор – кровь" при консервации должна быть 1:9. Такой метод стабилизации крови используется в случае необходимости ее срочного применения. Так, гепаринизированная кровь получила применение при проведении операций с использованием аппаратов искусственного кровообращения – ею заполняют аппарат.

6. Непрямое переливание крови,проба на совместимость.

Проба на индивидуальную совместимость крови донора и реципиента . Основные понятия Пробы на совместимость групп крови АВ0 и Rh производятся отдельно. Выполняются эти пробы разными методами в связи с тем, что антитела системы АВ0 и резус-системы имеют разные свойства и проявляют свое действие при различных условиях.Целью пробы на индивидуальную совместимость является предотвращение трансфузий несовместимых эритроцитов. Проба на совместимость производится врачом, переливающим кровь, непосредственно перед трансфузией. Для этого используют сыворотку больного и кровь донора из флакона, подготовленного для переливания.Тестирование сыворотки реципиента с эритроцитами предполагаемого донора – наиболее надежный способ выявления антител, способных вызвать повреждение перелитых эритроцитов, посттрансфузионные реакции, в том числе гемолитические. Проведение такой пробы позволяет: подтвердить АВ0-совместимость донора и реципиента; выявить практически все антитела в сыворотке реципиента, направленные против эритроцитов донора. Техника проведения пробы на индивидуальную совместимость Во всех случаях, кроме срочных трансфузий, проба проводится в два этапа (первый – без использования антиглобулинового реагента, второй – с антиглобулиновым реагентом).Первый этап: Поместить 2 капли сыворотки реципиента в маркированную пробирку.Добавить 1 каплю 5% взвеси трижды отмытых эритроцитов донора в физиологическом растворе (фиксация антител происходит лучше в растворе низкой ионной силы (LISS), поэтому предпочтительнее взвесить эритроциты в растворе LISS, обычно поставляемом изготовителем вместе с антиглобулиновым реагентом).Немедленно центрифугировать при 2000 об./мин в течение 15–20 с.Просмотреть супернатант на наличие гемолиза, мягко покачивая пробирку, отделить клеточный осадок от дна пробирки и определить наличие агглютинатов. Наличие гемолиза и/или агглютинатов на этой стадии может означать: несовместимость по системе АВ0;присутствие в сыворотке реципиента полных холодовых антител по специфичности АВ0 (анти-S, анти-P1 и др.).Второй этап: Если гемолиз отсутствовал, а после встряхивания пробирки эритроциты образовали гомогенную суспензию, инкубировать пробирку 30–40 мин (при использовании LISS время инкубации составляет 10–15 мин) при +37°С. Центрифугировать пробирку (см. п. 3) и просмотреть супернатант на наличие гемолиза и агглютинатов. Наличие гемолиза и/или агглютинатов (после встряхивания пробирки) говорит о присутствии у реципиента полных тепловых антител против эритроцитов донора.Если агглютинация и гемолиз отсутствуют, отмыть эритроциты 3–4 раза большим объемом (не менее 5 мл) физиологического раствора (недостаточное отмывание может привести к инактивации антиглобулинового реагента и ложноотрицательному результату теста, поскольку сыворотка даже в разведении 1:4 000 инактивирует равный объем антиглобулинового реагента); удалить полностью физиологический раствор после последнего отмывания.Добавить 1–2 капли антиглобулиновой сыворотки и тщательно смешать.Центрифугировать пробирку (см. п. 3), мягко разбить осадок и просмотреть пробирку на наличие агглютинатов. В случае необходимости срочной трансфузии можно ограничиться только 1–4-й стадиями пробы на совместимость. В этом случае допускается также проведение теста на индивидуальную совместимость на плоскости путем смешивания 1 капли сыворотки реципиента с маленькой каплей крови донора (соотношение сыворотки и крови должно быть около 10:1). В такой постановке проба на индивидуальную совместимость сводится фактически к выявлению несовместимости только по системе АВ0.. Интерпретация результатов пробы Донор считается совместимым, если ни на одной стадии пробы на индивидуальную совместимость не наблюдается ни гемолиза, ни агглютинации. Агглютинация свидетельствует о наличии аллоантител в сыворотке реципиента, специфичность которых может быть выявлена в специальной серологической лаборатории исследованием с панелью типированных эритроцитов. Такие реципиенты нуждаются в специальном подборе донора.Качество антиглобулинового реагента гарантируется изготовителем. Не следует использовать реагент с истекшим сроком годности или после повторного замораживания–оттаивания. Полезно в качестве контроля (если у вас возникли сомнения в качестве реагента) провести антиглобулиновый тест с резус-положительными эритроцитами, сенсибилизированными неполными анти-0-антителами. Непрямое переливание Непрямое переливание крови - это основной метод гемотрансфу-зии. Он отличается простотой выполнения и несложным техническим оснащением, при нем исключается опасность инфицирования донора и отрицательный психологический эффект присутствия донора при пе­реливании. Важно, что такой метод дает возможность заготовки больших ко­личеств донорской крови, которую можно использовать как в плано­вом, так и в экстренном порядке. При непрямом переливании заготовка крови в специальные флако­ны (пакеты) с консервантом осуществляется в плановом режиме на стан­циях (в отделениях) переливания крови. Заготовленная кровь, храня­щаяся в определенных условиях, составляет так называемый банк крови и используется по мере необходимости. В то же время этот метод имеет и ряд отрицательных моментов: в процессе хранения кровь и ее компоненты теряют некоторые ценные целебные свойства, а наличие консервантов может вызывать побочные реакции у реципиента.

1. Ушибы.

УШИБОМ называется закрытое механичес-кое повреждение мягких тканеи и органов без видимо­го нарушения их анатомической целостности. Наиболее часто ушибу подвержены поверхностно расположенные мягкие ткани - кожа и подкожная клетчатка. Однако возможен и ушиб внутренних органов (ушиб головного мозга, сердца, легких). Такие трав­мы относятся к повреждениям внутренних органов и являются предме­том частной хирургии. ДИАГНОСТИКА Основными клиническими проявлениями при ушибе являются боль, припухлость, гематома и нарушение функции поврежденного органа. Боль возникает сразу в момент получения травмы и может быть весь­ма значительной, что связано с повреждением большого числа болевых рецепторов в зоне поражения. Особенно болезненны ушибы при повреж­дении надкостницы. В течение нескольких часов боль стихает, а ее даль­нейшее появление обычно связано с нарастанием гематомы. Практически сразу после повреждения становится заметнойприпух­лость, болезненная при пальпации, без четких границ, постепенно пере­ходящая в неповреждённые ткани. Припухлость нарастает в течение нескольких часов (до конца первых суток), что связано с развитием травматического отека и воспалитель­ных изменений. Время проявлениягематомы (кровоизлияния) зависит от ее глуби­ны. При ушибе кожи и подкожной клетчатки гематома становится вид­на практически сразу (имбибиция, пропитывание кожи - внутрикожная гематома). При более глубоким расположении гематома может проявиться снаружи в виде кровоподтека лишь на 2-3 сутки. Цвет кровоподтекаменяется в связи с распадом гемоглобина. Свежий кровоподтек красного цвета, затем его окраска становится багровой, а через 3-4 дня он синеет. Через 5-6 дней кровоподтеки становятся зелеными, а затем желты­ми, после чего постепенно исчезают. Таким образом по цвету кровопод­тека можно определить давность повреждений и одновременностьих получения, что особенно важно в вопросах судебно-медицинской экспер­тизы. Нарушение функции при ушибе происходит обычно не сразу, а по мере нарастания гематомы и отека. При этом возникают ограничения в активных движениях, что связано с выраженным болевым синдромом, Пассивные движения могут быть сохранены, хотя тоже весьма болез­ненны. Это отличает ушибы от передомов и вывихов, при которых на­рушение объема движений возникает сразу после травмы и касается как активных, так и пассивных движений. ЛЕЧЕНИЕ Лечение ушибов довольно простое. Для уменьшения развития гематомы и травматического отека как можно раньше следует местно применить холода покой. Для этого к ме­сту повреждения прикладывают пузырь со льдом, который желательно держать в тедение 12-24часов с перерывами через 2 часа по 30-40ми­нут. Для уменьшения движений при ушибах в области суставов наклады­вают давящую повязку (как можно раньше от момента получения трав­мы). Для уменьшения отека применяют возвышенное положение конеч­ности. Начиная во 2-3 суток для ускорения рассасывания гематомы и ку­пирования отёка применяют тепловые процедуры (грелка, ультрафиоле­товое облучение, УВД-терапия). В некоторых случаях при образовании больших гематом, особенно глубоких, их пунктируют, после чего накладывают давящую повязку. Пункции -в ряде случаев приходится повторять. Эвакуация подобных гематом необходима из-за опасности развития инфекции (нагноившаяся гематома) или ее организации (организовав­шаяся гематома).

Материал, употребляемый во время операций и перевязок для осушения ран и операционного поля, тампонады ран и накладывания различных повязок, называется перевязочным. Перевязочный материал должен обладать хорошей гигроскопичностью, быстро высыхать, быть эластичным, легко стерилизоваться.

Из множества различных перевязочных материалов наибольшее распространение получили марля, вата, лигнин. Марля-хлопчатобумажная ткань, обладающая способностью хорошо всасывать кровь, гной и другие жидкости. Марля эластична, мягка, не засоряет рану и поэтому является тем материалом, из которого приготовляют бинты, салфетки, тампоны, турунды. Вата - волокна семенной коробочки хлопчатника. В медицине используют гигроскопическую вату, которая обладает большой всасывающей способностью. Вату накладывают на рану поверх марли, что увеличивает всасывающую способность повязки и защиту раны от внешних воздействий. Лигнин - гофрированные листы тончайшей бумаги, применяют вместо гигроскопической ваты.

Перевязочный материал выпускают как нестерильным в больших рулонах и пакетах (приготовление перевязочного материала нужного размера и его стерилизацию осуществляют медицинские работники на месте), так и стерильным в небольших герметически заклеенных пакетах из пергамента. Для оказания первой медицинской помощи вне лечебного учреждения (на производстве, в поле, в домашней обстановке) наиболее удобно применение стерильных пакетов. Стерильный перевязочный материал выпускается в виде бинтов или салфеток различных размеров и ширины и индивидуальных пакетов. Выпускают специальные бинты и пакеты, пропитанные антисептическими растворами: йодоформом, бриллиантовым зеленым, синтомицином и другими растворами, увеличивающими свертываемость крови, - гемостатическая марля.

Первую помощь на предприятиях и в учреждениях оказывают медицинские работники здравпунктов или санитарного поста, те работники предприятий, обученные оказанию первой помощи, имеющие в своем распоряжении аптечку первой помощи, носилки, шины. Здравпункты и санитарные посты должны быть обеспечены необходимым запасом стерильного перевязочного материала. Наиболее удобными для хранения и применения являются готовые стандартные пакеты со стерильными бинтами, салфетками, ватой. Обязательно наличие индивидуального перевязочного пакета, применение которого позволяет быстро и надежно защитить рану от загрязнения.

При отсутствии готового стерильного материала перевязочный материал можно приготовить самим из нестерильных больших кусков марли (рис. 1). Салфетки, тампоны складывают в пачки по 10 штук укладывают в биксы и автоклавируют. Стерильный перевязочный материл хранят в закрытых биксах. При отсутствии стандартных индивидуальных пакетов делают импровизированные индивидуальные пакеты. Для этого берут кусок марли размером 6X9 см, в центре его почти до краев укладывают ровный слой ваты, складывают пополам марлей наружу и завертывают в пергаментную бумагу размером 16X16 см. Индивидуальные пакеты укладывают в бикс и стерилизуют.

Рис. 1. Приготовление перевязочного материала.
а - большой салфетки; б - средней салфетки; в - бинта (пунктиром отмечены линии складывания марли).

Стерилизация белья, перевязочного материала наиболее часто осуществляется паром под давлением в автоклавах. Отсюда другое название данного вида стерилизации - автоклавирование. Автоклав представляет собой металлический двустенный котел (рис. 2) с герметически завинчивающейся крышкой. Между наружной и внутренней стенкой заливают воду до уровня, указанного на водомерном стекле. Внутренняя часть автоклава является стерилизационной камерой, в которую помещают стерилизуемые предметы. Нагревание воды в автоклаве осуществляется при помощи электронагревательных приборов или примусов, газовых горелок. При кипении вода испаряется, но так как выхода для пара нет, то в автоклаве повышаются давление и температура. При определенных температуре и давлении микробы погибают. О давлении внутри автоклава судят по манометру. Красная черта указывает предел давления, которое можно создавать в данном автоклаве. Регулируют давление при помощи предохранительного клапана.

К перевязочному материалу относят марлевые шарики, тампоны, салфетки, бинты, турунды, ватно-марлевые тампоны. Перевязочный материал обычно готовят непосредственно перед стерилизацией, используя специальные приёмы для предотвращения осыпания отдельных нитей марли. Для удобства подсчёта шарики укладывают по 50-100 штук в марлевые салфетки, салфетки и тампоны связывают по 10 штук. Перевязочный материал повторно не используют, после применения его уничтожают.

К операционному белью относят хирургические халаты, простыни, полотенца, подкладные. Материалом для их изготовления служат хлопчатобумажные ткани. Операционное бельё многократного применения после использования проходит стирку, причём отдельно от других видов белья.

2.2.2. Стерилизация перевязочного материала и операционного белья

Перевязочный материал и бельё стерилизуют автоклавированием при стандартных режимах. Перед стерилизацией перевязочный материал и бельё укладывают в биксы. Существует три основных вида укладки бикса: универсальная, целенаправленная и видовая укладки.

Универсальная укладка

Обычно используют при работе в перевязочной и при малых операциях. Бикс условно разделяют на секторы, каждый из них заполняют определённым видом перевязочного материала или белья: в один сектор помещают салфетки, в другой – шарики, в третий – тампоны и т. д.

Целенаправленная укладка

Предназначена для выполнения типичных манипуляций, процедур и малых операций. Например, укладка для трахеостомии, катетеризации подключичной вены, перидуральной анестезии и пр. в бикс укладывают все инструменты, перевязочный материал и бельё, необходимые для осуществления процедур.

Видовая укладка

Обычно используют в операционных, где необходимо большое количество стерильного материала. При этом в один бикс, например, укладывают хирургические халаты, в другой – простыни, в третий – салфетки и т. д. В небольшом количестве используют перевязочный материал в упаковках, прошедших лучевую стерилизацию. Существуют и специальные наборы операционного белья одноразового использования (халаты и простыни), изготовленные из синтетических тканей, также подвергшихся лучевой стерилизации.

2.3 Способы контроля стерильности

Все действия по обработке и стерилизации инструментов, белья и прочего подлежат обязательному контролю. Контролируют как эффективность стерилизации, так и качество предстерилизационной подготовки.

Методы контроля стерильности делят на прямой и непрямые.

2.3.1. Прямой метод контроля стерильности

Представляет собой бактериологическое исследование. Методика : специальной стерильной палочкой проводят по стерильным инструментам (коже рук хирурга или операционного поля, операционному белью и пр.), после чего помещают её в стерильную пробирку и отправляют в бактериологическую лабораторию, где проводят посев на различные питательные среды и таким образом определяют бактериальную загрязнённость. Бактериологический метод контроля стерильности наиболее точен. Отрицательный момент – длительность проведения исследования: результат посева бывает готов лишь через 3-5 сут, а использовать инструменты нужно непосредственно после стерилизации. Поэтому бактериологическое исследование проводят в плановом порядке и по его результатам судят о методических погрешностях в работе медперсонала или в дефектах используемого оборудования. По существующим нормативам, несколько различающимся для разного вида инструментария, бактериологическое исследование необходимо проводить 1 раз в 7-10 дней. Кроме того, в 2 раза в год подобное исследования во всех подразделениях больницы проводят районные и городские санитарно-эпидемиологические службы.

Стерилизация медицинского инвентаря – длительная и трудоемкая процедура, без которой не может обойтись ни одна клиника. Указанная манипуляция проходит в три этапа, каждый из которых нуждается в особой внимательности и скрупулезности. С целью облегчения работы медиков и качественного уничтожения вредоносных микроорганизмов на сегодняшний день активно применяются стерилизационные медицинские приборы. Главные их достоинства – удобность и надежность.

Что должно обязательно стерилизоваться в медицинских учреждениях?

Рассматриваемый вид обработки применяется в отношении всех медицинских инструментов, контактирующих с раневой поверхностью, слизистыми покровами, кровью потерпевшего.

Указанный инструментарий состоит из следующих компонентов:

1. Перевязочного материала.
2. Лабораторной посуды: мензурок, стеклянных тонких трубочек, колбочек.
3. Операционного белья.
4. Иголок.
5. Резиновых изделий, используемых в медицинских целях: катетеров, перчаток, зондов, дренажных трубок.
6. Приспособлений, которые касаются поврежденных поверхностей организма.
7. Мелких стоматологических инструментов: боров, каналонаполнителей, дрильборов.
8. Приборов и аппаратуры для диагностических мероприятий.

Видео: Чистка и дезинфекция конвенциональных медицинских инструментов

Основные этапы стерилизации

Рассматриваемая процедура проводится в три этапа, последовательность которых должна соблюдаться в обязательном порядке:

1.Дезинфекция

Предусматривает ликвидацию вредоносных микроорганизмов в помещении, на инструментах и расходных материалах, которые используются в клиниках. При этом, дезинфицируют не только полы, стены и жесткую мебель, но также воздух, средства ухода за пациентами, санитарно-технические устройства и т.д.

• Пребывание в больнице человека с инфекционным недугом – повод для проведения очаговой дезинфекции .
• В целом же, еженедельно в операционных и манипуляционных кабинетах осуществляет генеральную уборку. Влажная уборка помещения осуществляется каждый день. Подобный комплекс мероприятий именуют профилактической дезинфекцией .

Исходя из назначения инвентаря, который вступает в контакт с кожным покровом, дезинфекция бывает трех видов:

1. Низкого уровня . Показана для обеззараживания приспособлений, что контактируют с неповрежденной кожей. Основные средства данного вида дезинфекции – препараты, содержащие хлор, фенол, этиловый или изопропиловый спирт, а также йодофоры. Указанные препараты не способны уничтожать продукты размножения грибов и бактерий, а также мелкие вирусы не липидной природы. С остальной группой болезнетворных микрочастиц они справляются хорошо.
2. Высокого уровня . Применяется для обработки медицинских приспособлений, которые используют для контакта с кровью, растворами для инъекций, кровеносными сосудами, чистыми тканями организма. Главными компонентами указанного вида дезинфекции являются 6-процентный раствор перекиси водорода, соединения альдегида и хлора, а также препараты, включающие надуксусную кислоту. Подобные средства устраняют все болезнетворные микрочастицы, кроме продуктов размножения грибков.
3. Промежуточного уровня . Дает возможность справиться с крупными липидными вирусами, вегетативными формами бактерий. Нелипидные микровирусы, продукты размножения бактерий устойчивы к подобной очистке. Дезинфекцию промежуточного уровня применяют в отношении инструментов, которые вступают в контакт со слизистыми оболочками либо с рваными кожными покровами.

Дезинфекция осуществляется несколькими способами:

• Механическим. Предусматривает протирание поверхностей влажной тряпкой, стирку операционного и постельного белья, обработку мебели и пола пылесосом. Кроме того, обязательным является регулярное проветривание всех помещений в клинике.
• Биологическим. Для ликвидации тех или иных вредоносных микроорганизмов обращаются к бактериофагам. Указанные антагонисты обладают узким спектром действия, в связи с чем их используют в основном для дезинфекции помещения и твердых поверхностей.
• Физическим. На объекты, которые подлежат обеззараживанию, воздействуют высокими температурами. Это может быть кипячение в растворе дистиллированной воды с содой, обработка паром, сухим воздухом. Данный метод не является опасным для сотрудников клиники и отличается своей надежностью.
• Химическим. Наиболее популярный метод дезинфекции в медучреждениях. Может быть весьма агрессивным для тех, кто работает с химическими реагентами, поэтому изделия, подлежащие дезинфекции рекомендуется располагать на решетках в камерах. Суть рассматриваемой методики заключается в погружении мединвентаря в обеззараживающие химрастворы. Емкость, в которую заливают указанные препараты, должна быть изготовлена из пластмассы, стекла, либо покрыта слоем эмали. Сами дезсредства нужно хранить в плотно закрытых емкостях с указанием точного названия препарата, даты его изготовления и сроков применения. При работе с такими веществами медсестрам необходимо надевать респираторную маску, очки и перчатки. Помещение в это время должно вентилироваться либо проветриваться. Не допускается разбавлять те или иные химические растворы теплой/горячей водой: это спровоцирует усиленное испарение вредных для организма веществ.

Все средства химической дезинфекции, в силу своего состава, условно делятся на 7 групп:

1. Кислородосодержащие препараты. Активным компонентом здесь выступает кислород. Наиболее ярким представителем данной группы является перекись водорода.
2. Гуанидсодержащие средства. Хорошо справляются с ликвидацией множества разнообразных патогенных бактерий. Они представлены следующими изделиями: Гибитан, Лизетол АФ, Фогуцид и т.д.
3. Галогеносодержащие вещества , основу которых составляют йод, хлор, а также бром.
4. Поверхностно-активные вещества (ПАВы), что не приводят к образованию ржавчины на металлах со временем. Благодаря их свойствам возможно совмещать процедуру дезинфекции и предстерилазционной очистки.
5. Спирты. Показаны для обработки рабочих поверхностей, медтехники, а также для кожных покровов.
6. Препараты, содержащие янтарный или глутаровый альдегид . Эффективно справляются с бактериями, вирусами, спорами, макроорганизмами.
7. Средства на основе фенола. Зачастую их применяют для очищения помещений, где находятся больные туберкулезом.

Загрязненный рабочий инвентарь сразу после применения погружают специальную емкость, которая залита химическим обеззараживающим раствором. Высота жидкости над уровнем инструмента должна составлять не менее 1 см. При значительных загрязнениях очистку осуществляют дважды. Дезинфекция заканчивается промывкой медицинского инвентаря под проточной водой. Если присутствуют загрязнения на данном этапе, их устраняют механически, посредством ерша, салфетки либо щетки.

2. Предстерилазационная очистка (ПСО)

Она необходима для качественной обработки инструментария, который контактирует с раневыми поверхностями, слизистыми оболочками.

Указанные приспособления предварительно разбирают и погружают в емкость с заранее приготовленным раствором. Для подобной методики изготавливают специальные растворы — или же применяют уже готовые дезинфектанты. В первом случае используют воду, перекись водорода, а также моющие препараты.

Качество очищения мединструмента оценивают путем проведения специальных проб на трех единицах изделий.

3. Непосредственная стерилизация

Является обязательной методикой обработки инструментов, которые соприкасаются с чистыми тканями организма, кровеносными сосудами, а также кровью.

Полная стерилизация осуществляется при помощи стерилизаторов – специального оборудования.

Различают три основных методики стерилизации:

1) Термическая

Подразделяется на:

• Паровую , с применением автоклава. Обеззараживание достигается путем воздействия пара под избыточным давлением. Возбудители болезни здесь начинают гибнуть уже при температуре 120С. Указанная процедура может длиться от 15 минут до 1 часа. Время очистки зависит от материала, из которого изготовлено изделие и степени его загрязнения.
• Воздушную , при помощи сухожарового шкафа. Используется для обеззараживания предметов, которые в следствие специфической структуры не могут поддаваться воздействию газов и паров. Вредоносные микроорганизмы в таких устройствах ликвидируются под влиянием высоких температур (180 С).
• Микроволновую . Подходит для очистки небольшого количества хирургического либо лабораторного инвентаря. Принцип стерилизации заключается в помещении объектов в условия частичного вакуума, и воздействии на них микроволнами. Подобная манипуляция занимается всего 30 секунд.

2) Химическая

Бывает нескольких видов:

1. Плазменная. Предусматривает использование 20-процентного пероксида водорода.
2. Стерилизация озоном. Длится около 60 минут.
3. Очистка с применением паров химических соединений. Для подобных целей могут использоваться:

• Окись этилена с бромистым метилом: для стерилизации резиновых, стеклянных, металлических, полимерных изделий, а также медоптики, кардиостимуляторов. Для подобного способа обеззараживания используют газовый стерилизатор.
• Пары формальдегида и воды. При температуре 75С в стационарном формалиновом стерилизаторе на протяжении 5 часов обрабатывают инвентарь из резины, стекла, металла, полимера.

3) Радиоактивная

Основана на принципе трансформации ионной энергии в химическую и тепловую. Это благоприятствует разрушению ДНК возбудителей болезней, что останавливает процесс размножения патогенных микрочастиц, и полностью прекращает их существование.

Данный метод зачастую используют в заводских условиях, в ходе массового выпуска медицинского инвентаря (к примеру, разовые шприцы).

Видео: Процесс дезинфекции и стерилизации медицинских инструментов

Все методы стерилизации инструментов, перевязочного материала и т.д. в медицине сегодня – необходимая аппаратура

На сегодняшний день, в медицинской практике чаще всего применяют стерилизаторы, которые производят очистку посредством горячего воздуха, либо пара.

Каждый из них имеет свои недостатки и преимущества.

1. Сухой метод стерилизации негативно влияет на прочность стекла и металла. Страдают также мелкие стоматологические приспособления: при воздействии на них температурами свыше 160 С они притупляются и становятся хрупкими. Еще одним негативным моментом рассматриваемого вида обеззараживания является невозможность контролировать качество очистки предметов.
2. На сегодняшний день наиболее оперативным и качественным средством обеззараживания является паровая методика . С ее помощью можно обрабатывать инструменты, которые чувствительны к высоким температурам. Посредством указанных приборов медицинские изделия проходят все три этапа стерилизации. Пар для стерилизации в автоклаве вырабатывается посредством кипячения воды в котле. В стерилизационную камеру, куда помещают загрязненные предметы, поступает указанный пар. С целью поддержания нормального давления предусмотрен предохранительный клапан. Кроме того, автоклав укомплектован манометром и термометром для измерения соответственно давления паровой массы и температуры.

Современные автоклавы бывают трех классов:

• Оборудование класса N. Хорошо справляется с очищением неупакованных материалов из ткани, а также со сплошным гладким медицинским инвентарем.
• Устройства класса S. Могут применяться для обеззараживания объектов из ткани, что упакованы, а также для пористых и гладких инструментов.
• Автоклавы класса В. Являются универсальным прибором для стерилизации, так как подходят для любого медицинского инвентаря. Они особенно популярны в стоматологических клиниках.

C целью облегчения и ускорения процесса стерилизации, рынок медицинских товаров предлагает следующее оборудование:

1. Приборы для тщательной упаковки инвентаря перед проведением стерилизации.
2. Моечные аппараты для дезинфекции . Помогают избавиться от видимых загрязнений. Их главная цель – предстерилизационная обработка медицинских инструментов.
3. Дистилляторы. Актуальны для медицинских учреждений, которые активно практикуют автоклавы, — для паровой очистки применяют дистиллированную воду.