Предстерилизационная подготовка и стерилизация перевязочного материала и операционного белья. Асептика, определение

Виды перевязочного материала и операционного белья

К перевязочному материалу относят марлевые шарики, тампоны, салфетки, бинты, турунды, ватно-марлевые тампоны. Перевязочный материал обычно готовят непосредственно перед стерилизацией, используя специальные приёмы для предотвращения осыпания отдельных нитей марли. Для удобства подсчёта шарики укладывают по 50- 100 штук в марлевые салфетки, салфетки и тампоны связывают по 10 штук. Перевязочный материал повторно не используют, после применения его уничтожают.

К операционному белью относят хирургические халаты, простыни, полотенца, подкладные. Материалом для их изготовления служат хлопчатобумажные ткани. Операционное бельё многократного применения после использования проходит стирку, причём отдельно от других видов белья.

Стерилизация

Перевязочный материал и бельё стерилизуют автоклавированием при стандартных режимах. Перед стерилизацией перевязочный материал и бельё укладывают в биксы. Существует три основных вида укладки бикса: универсальная, целенаправленная и видовая укладки.

Универсальная укладка. Обычно используют при работе в перевязочной и при малых операциях. Бикс условно разделяют на секторы, каждый из них заполняют определённым видом перевязочного материала или белья: в один сектор помещают салфетки, в другой - шарики, в третий - тампоны и т.д.

Целенаправленная укладка. Предназначена для выполнения типичных манипуляций, процедур и малых операций. Например, укладка для трахеостомии, катетеризации подключичной вены, перидуральной анестезии и пр. В бикс укладывают все инструменты, перевязочный материал и бельё, необходимые для осуществления процедуры.

Видовая укладка. Обычно используют в операционных, где необходимо большое количество стерильного материала. При этом в один бикс, например, укладывают хирургические халаты, в другой - простыни, в третий - салфетки и т.д.

В небольшом количестве используют перевязочный материал в упаковках, прошедший лучевую стерилизацию. Существуют и специальные наборы операционного белья одноразового использования (халаты и простыни), изготовленного из синтетических тканей, также подвергшихся лучевой стерилизации.

Обработка рук хирурга

Обработка (мытьё) рук хирурга - очень важная процедура. Существуют определённые правила мытья рук.

Классические методы обработки рук Спасокукоцкого-Кочергина, Альфельда, Фюрбрингера и другие имеют лишь исторический интерес, их в настоящее время не применяют.

Современные методы обработки рук хирурга

Обработка рук хирурга состоит из двух этапов: мытья рук и воздействия антисептическими средствами.

Мытьё рук

Применение современных способов предполагает первоначальное мытьё рук с мылом или с помощью жидких моющих средств (при отсутствии бытового загрязнения рук).

Воздействие антисептических средств

Используемые для обработки рук химические антисептики должны иметь следующие свойства:

Обладать сильным антисептическим действием;

Быть безвредными для кожи рук хирурга;

Быть доступными и дешёвыми (так как их применяют в больших объёмах).

Современные способы обработки рук не требуют специального дубления (используют плёнкообразующие антисептики или антисептики с элементом дубления).

Руки тщательно обрабатывают от кончиков пальцев до верхней трети предплечья. При этом соблюдают определённую последовательность, в основе которой лежит принцип - не касаться обработанными участками рук менее чистой кожи и предметов.

Основными современными средствами обработки рук служат первомур, хлоргексидин, дегмин (дегмицид), церигель, АХД, евросепт и пр.

Обработка рук первомуром

Первомур (предложен в 1967 г. Ф.Ю. Рачинским и В.Т. Овсипяном) - смесь муравьиной кислоты, перекиси водорода и воды. При соединении компонентов образуется надмуравьиная кислота - мощный антисептик, вызывающий образование тончайшей плёнки на поверхности кожи, закрывающей поры и исключающей необходимость дубления. Используют 2,4% раствор, приготовленный ex temporo.

Методика: мытьё рук проводят в тазах в течение 1 мин, после чего руки высушивают стерильной салфеткой. Преимущество метода - его быстрота. Недостаток: возможно развитие дерматита на руках хирурга.

Обработка рук хлоргексидином

Используют 0,5% спиртовой раствор хлоргексидина, что исключает необходимость дополнительного воздействия спиртом с целью дубления, а также высушивания вследствие быстрого испарения спиртового раствора.

Методика: руки дважды обрабатывают тампоном, смоченным антисептиком, в течение 2-3 мин. Относительный недостаток метода - его длительность.

Обработка дегмином и дегмицидом

Эти антисептики относят к группе поверхностно-активных веществ (детергентов).

Методика: обработку проводят в тазах в течение 5-7 мин, после чего руки высушивают стерильной салфеткой. Недостаток метода - его длительность.

Обработка АХД, АХД-специаль, евросептом

Действующим началом этих комбинированных антисептиков служит этанол, эфир полиольной жирной кислоты, хлоргексидин.

Методика: препараты находятся в специальных флаконах, из них при нажатии на специальный рычаг определённая доза препаратов выливается на руки хирурга, и он втирает раствор в кожу рук в течение 2-3 мин. Процедуру повторяют дважды. В дополнительном дублении и высушивании нет необходимости. Метод практически лишён недостатков, в настоящее время его считают самым прогрессивным и распространённым.

Несмотря на существующие способы обработки рук, в настоящее время все операции и манипуляции при контакте с кровью больного хирурги должны выполнять только в стерильных перчатках!

При необходимости выполнения небольших манипуляций или в критических ситуациях допускают надевание стерильных перчаток без предшествующей обработки рук. При выполнении обычных хирургических операций так делать нельзя, так как любое повреждёние перчатки может привести к инфицированию операционной раны.

Обработка операционного поля

Предварительно проводят санитарно-гигиеническую обработку (мытьё в ванне или под душем, смену постельного и нательного белья). В день операции сбривают волосяной покров в области операционного поля (сухое бритьё). На операционном столе операционное поле обрабатывают химическими антисептиками (органическими йодсодержащими препаратами, хлоргексидином, первомуром, АХД, стерильными клеящимися плёнками). При этом соблюдают следующие правила:

Широкая обработка;

Последовательность «от центра - к периферии»;

Загрязнённые участки обрабатывают в последнюю очередь;

Многократность обработки в ходе операции (правило Филончикова-Гроссиха): обработку кожи выполняют перед отграничением

стерильным бельём, непосредственно перед разрезом, а также перед наложением кожных швов и после него.

Правила подготовки к выполнению операции

Кроме знания основ обработки рук хирурга, операционного поля, стерилизации инструментов и т.д., необходимо соблюдать определённую последовательность действий перед началом любой хирургической операции. Обычно подготовку к хирургическому вмешательству проводят следующим образом.

Первой к операции готовится операционная сестра. Она переодевается в специальный операционный костюм, надевает бахилы, колпак и маску. Затем в предоперационной она проводит обработку рук по одному из указанных выше способов, после чего входит в операционную, открывает бикс со стерильным бельём (пользуясь специальной ножной педалью для открывания крышки бикса) и надевает на себя стерильный халат, одновременно попадая обеими руками в его рукава, не касаясь при этом ни халатом, ни руками посторонних предметов, что может привести к нарушению стерильности. После этого сестра завязывает на рукавах халата завязки, а сзади халат завязывает санитар, его руки нестерильны, поэтому он может касаться только внутренней поверхности халата и той его части, которая оказывается на спине сестры и в последующем считается нестерильной.

Вообще в течение всей операции стерильным считают халат сестры и хирурга спереди до пояса. Стерильные руки нельзя поднимать выше плеч и опускать ниже пояса, что связано с возможностью нарушения стерильности при неосторожных движениях.

После облачения в стерильную одежду сестра надевает стерильные перчатки и накрывает стерильный стол для выполнения вмешательства: малый (или большой) операционный столик покрывают четырьмя слоями стерильного белья, затем на него в определённой последовательности выкладывают необходимые для операции стерильные инструменты и перевязочный материал.

Хирург и ассистенты переодеваются и обрабатывают руки аналогичным образом. После этого один из них получает из рук сестры длинный инструмент (обычно корнцанг) с салфеткой, смоченной антисептиком, и производит обработку операционного поля, несколько раз меняя салфетку с антисептиком. Затем сестра надевает на хирурга и ассистента стерильные халаты, набрасывая их на вытянутые стерильные руки, и завязывает завязки на запястьях. Сзади халаты завязывает санитар.

После облачения в стерильные халаты хирурги ограничивают операционное поле стерильным хирургическим бельём (простынями, подкладными или полотенцами), закрепляя его специальными бельевыми зажимами или цапками. Сестра надевает на руки хирургов стерильные перчатки. Ещё раз проводят обработку кожи и выполняют разрез, то есть начинают проведение хирургической операции.

Способы контроля стерильности

Все действия по обработке и стерилизации инструментов, белья и прочего подлежат обязательному контролю. Контролируют как эффективность стерилизации, так и качество предстерилизационной подготовки.

Контроль стерильности

Методы контроля стерильности делят на прямой и непрямые.

Прямой метод

Прямой метод контроля стерильности - бактериологическое исследование: специальной стерильной палочкой проводят по стерильным инструментам (коже рук хирурга или операционного поля, операционному белью и пр.), после чего помещают её в стерильную пробирку и отправляют в бактериологическую лабораторию, где проводят посев на различные питательные среды и таким образом определяют бактериальную загрязнённость.

Бактериологический метод контроля стерильности наиболее точен. Отрицательный момент - длительность проведения исследования: результат посева бывает готов лишь через 3-5 сут, а использовать инструменты нужно непосредственно после стерилизации. Поэтому бактериологическое исследование проводят в плановом порядке и по его результатам судят о методических погрешностях в работе медицинского персонала или дефектах используемого оборудования. По существующим нормативам, несколько различающимся для разного вида инструментария, бактериологическое исследование необходимо проводить 1 раз в 7-10 дней. Кроме того, 2 раза в год подобные исследования во всех подразделениях больницы проводят районные и городские санитарно-эпидемиологические службы.

Непрямые методы

Непрямые методы контроля используют в основном при термических способах стерилизации. С их помощью можно определить величину температуры, при которой проводили обработку, не давая точный ответ на вопрос о присутствии или отсутствии микрофлоры. Преимущество непрямых методов в быстроте получения результата и возможности их использования при каждой стерилизации.

При автоклавировании в бикс обычно укладывают ампулу (пробирку) с порошкообразным веществом, имеющим температуру плавления в пределах 110-120 °С. После стерилизации при открытии бикса сестра прежде всего обращает внимание на эту ампулу: если вещество расплавилось, то материал (инструменты) можно считать стерильными, если же нет - нагревание было недостаточным и пользоваться таким материалом нельзя, так как он нестерилен. Для подобного метода наиболее часто используют бензойную кислоту (температура плавления 120 °С), резорцин (температура плавления 119 °С), антипирин (температура плавления 110 °С). Вместо ампулы в бикс можно поместить термоиндикатор или максимальный термометр, по которому также можно определить, какова была температура во время обработки.

Аналогичные непрямые способы используют при стерилизации в сухожаровом шкафу. Однако здесь применяют вещества с более высокой температурой плавления (аскорбиновая кислота - 190 °С, янтарная кислота - 190 °С, тиомочевина - 180 °С), другие термоиндикаторы или термометры.

Контроль качества предстерилизационной обработки

Для контроля качества предстерилизационной обработки используют химические вещества, с помощью которых можно обнаружить на инструментах следы неотмытой крови или остатки моющих средств. Реактивы обычно изменяют свой цвет в присутствии соответствующих веществ (крови, щелочных моющих средств). Методы используют после проведения обработки перед стерилизацией.

Для обнаружения так называемой скрытой крови наиболее часто применяют бензидиновую пробу.

Для выявления следов моющих веществ используют кислотно-щелочные индикаторы, наиболее распространена фенолфталеиновая проба.

Профилактика имплантационной инфекции

Имплантация - внедрение, вживление в организм больного искусственных, чужеродных материалов и приспособлений с определённой лечебной целью.

Особенности профилактики имплантационной инфекции

Профилактика имплантационной инфекции - обеспечение строжайшей стерильности всех предметов, внедряемых в организм больного. В отличие от контактного пути распространения инфекции, при имплантационном отмечают практически 100% контагиозность. Оставаясь в организме больного, где существуют благоприятные условия (температура, влажность, питательные вещества), микроорганизмы долго не погибают и часто начинают размножаться, вызывая нагноение. При этом внедрённое в организм инородное тело в последующем длительно поддерживает воспалительный процесс. В части случаев происходит инкапсуляция колоний микроорганизмов, которые не погибают и могут стать источником вспышки гнойного процесса через месяцы или годы. Таким образом, любое имплантированное тело - возможный источник так называемой дремлющей инфекции.

Источники имплантационной инфекции

Что же хирурги «оставляют» в организме больного? Прежде всего шовный материал. Без этого не обходится практически ни одно вмешательство. В среднем во время полостной операции хирург накладывает около 50-100 швов.

Вероятным источником имплантационной инфекции становятся дренажи - специальные трубки, предназначенные для оттока жидкостей, реже воздуха (плевральный дренаж) или предназначенные для введения лекарств (катетеры). Учитывая этот путь распространения инфекции, существует даже понятие «катетерный сепсис» (сепсис - тяжёлое общее инфекционное заболевание, см. главу 12).

Кроме шовного материала и дренажей, в организме больного остаются протезы клапанов сердца, сосудов, суставов и т.д., различные металлические конструкции (скобки, скрепки из шовных аппаратов, винты, спицы, шурупы и пластинки для остеосинтеза), специальные приспособления (кава-фильтры, спирали, стенты и пр.), синтетическая сетка, гомофасция, а иногда и трансплантированные органы.

Все имплантаты, безусловно, должны быть стерильны. Способ стерилизации зависит от того, из какого материала они выполнены. Многие протезы имеют сложную конструкцию и строгие специальные правила стерилизации. Если резиновые дренажи и катетеры можно стерилизовать в автоклаве или кипятить, то некоторые изделия из пластмассы, а также из разнородных материалов следует стерилизовать с помощью химических методов (в растворах антисептиков или газовом стерилизаторе).

В то же время сейчас основным, практически наиболее надёжным и удобным методом признана заводская стерилизация γ-лучами.

Основным вероятным источником имплантационной инфекции остаётся шовный материал, постоянно используемый хирургами.

Стерилизация шовного материала

Виды шовного материала

Шовный материал неоднороден, что связано с разными его функциями. В одном случае наиболее важна прочность нитей, в другом - их рассасывание со временем, в третьем - инертность по отношению к окружающим тканям и т.д. Во время операции хирург для каждого конкретного шва выбирает самый подходящий вид нити. Существует достаточное разнообразие видов шовного материала.

Шовный материал естественного и искусственного происхождения

К шовному материалу естественного происхождения относят шёлк, хлопчатобумажную нить и кетгут. Происхождение первых двух видов общеизвестно. Кетгут изготавливают из подслизистого слоя кишки крупного рогатого скота. Шовный материал искусственного происхождения в настоящее время представлен огромным количеством нитей, созданных из синтетических химических веществ: капрон, лавсан, фторлон, полиэстер, дакрон и пр.

Рассасывающийся и нерассасывающийся шовный материал

Рассасывающиеся нити используют для сшивания быстро срастающихся тканей в тех случаях, когда не нужна высокая механическая прочность. Таким материалом сшивают мышцы, клетчатку, слизистые оболочки органов желудочно-кишечного тракта, жёлчных и мочевых путей. В последнем случае наложение рассасывающихся швов позволяет избежать образования конкрементов вследствие оседания солей на лигатурах. Классический пример рассасывающегося шовного материала - кетгут. Кетгутовые нити полностью рассасываются в организме через 2-3 нед. Удлинения сроков рассасывания, а также увеличения прочности кетгута достигают импрегнацией нитей металлами (хромированный кетгут, реже - серебряный кетгут), в этом случае сроки рассасывания увеличиваются до 1-2 мес.

К синтетическим рассасывающимся материалам относят дексон, викрил, оксцилон. Сроки их рассасывания примерно такие же, как у хромированного кетгута, но они обладают повышенной прочностью, что позволяет использовать более тонкие нити.

Все остальные нити (шёлк, капрон, лавсан, полиэстер, фторлон и пр.) называют нерассасывающимися - они остаются в организме больного на всю жизнь (кроме снимаемых кожных швов).

Шовный материал с различным строением нити

Различают плетёный и кручёный шовный материал. Плетёный труднее изготавливать, но он более прочен. В последнее время успехи химии привели к возможности использования нити в виде моноволокна, обладающего высокой механической прочностью при малом диаметре. Именно мононити применяют в микрохирургии, косметической хирургии, при операциях на сердце и сосудах.

Травматический и атравматический шовный материал

В течение многих лет во время хирургической операции операционная сестра непосредственно перед наложением шва вдевала соответствующую нить в разъёмное ушко хирургической иглы. Такой шовный материал в настоящее время называют травматическим.

В последние десятилетия широкое распространение получил атравматический шовный материал. Нить в заводских условиях прочно соединена с иглой и предназначена для наложения одного шва. Основное преимущество атравматического шовного материала - примерное соответствие диаметра нити диаметру иглы (при использовании травматического материала толщина нити значительно меньше диаметра ушка иглы), таким образом, нить практически полностью закрывает собой дефект в тканях после прохождения иглы. В связи с этим именно атравматический шовный материал необходимо использовать при сосудистых и косметических швах. Учитывая также остроту одноразовых игл и удобство в работе, следует полагать, что в ближайшее время атравматический шовный материал постепенно полностью вытеснит травматический.

Толщина нитей

Для удобства в работе всем нитям в зависимости от их толщины присвоены номера. Самая тонкая нить имеет №0, самая толстая - №10. При общехирургических операциях обычно используют нити от №1 до №5. Нить №1, например, можно использовать для прошивания или перевязки мелких сосудов, наложения серо-серозных швов на стенку кишки. Нити №2 и 3 - для перевязки сосудов среднего калибра, наложения серозно-мышечных швов на кишку, ушивания брюшины и пр. Нить №5 обычно применяют для сшивания апоневроза.

При выполнении сосудистых операций, особенно микрохирургических вмешательств, необходимы ещё более тонкие нити, чем нить №0. Таким нитям стали присваивать №№1/0, 2/0, 3/0 и т.д. Самая тонкая нить, используемая сейчас в офтальмологии и при операциях на лимфатических сосудах, имеет №10/0. Следует отметить, что нити отличаются и по другим свойствам: одни лучше скользят и склонны к развязыванию, другие пружинят при натяжении, более или менее инертны по отношению к тканям, более или менее прочны и т.д.

В последнее время получили распространение нити, обладающие антимикробной активностью за счёт введения в их состав антисептиков и антибиотиков (летилан-лавсан, фторлон и др.).

Несколько особняком стоят металлические скрепки, клеммы, клипсы, изготавливаемые из нержавеющей стали, титана, тантала и других сплавов.

Этот вид шовного материала используют в специальных сшивающих аппаратах.

Способы стерилизации шовного материала

В настоящее время основной способ стерилизации шовного материала - лучевая стерилизация в заводских условиях. Это в полной мере касается атравматического шовного материала: иглу с нитью помещают в отдельную герметичную упаковку, на которой указаны размеры, кривизна и вид (колющая или режущая) иглы, материал, длина и номер нити. Шовный материал стерилизуют, затем он в упаковке поступает в лечебные учреждения.

Также можно стерилизовать и просто нити. Кроме того, отрезки нитей можно поместить в герметичные стеклянные ампулы со специальным антисептическим раствором, а катушки с нитями - в специальные герметичные контейнеры с таким же раствором.

Классические способы стерилизации шёлка (метод Кохера) и кетгута (метод Ситковского в парах йода, методы Губарева и Клаудиуса в спиртовом и водном растворах Люголя) в настоящее время запрещены для использования из-за их длительности, сложности и не всегда достаточной эффективности.

Стерилизация конструкций, протезов, трансплантатов

Способ стерилизации имплантатов целиком зависит от материала, из которого они изготовлены.

Металлические конструкции для остеосинтеза (пластинки, шурупы, винты, спицы) стерилизуют вместе с металлическими нережущими инструментами в автоклаве или сухожаровом шкафу.

Более сложные протезы (протезы клапанов сердца, суставов), состоящие не только из металлических, но и из пластмассовых деталей, лучше стерилизовать химическими способами - в газовом стерилизаторе или путём замачивания в растворах антисептиков.

В последнее время ведущие фирмы-производители протезов выпускают их в герметичных упаковках, стерилизованных лучевым методом.

Кроме различных конструкций и протезов, источником имплантационной инфекции могут стать аллогенные органы, изъятые из другого организма при операции трансплантации. Стерилизация трансплантатов невозможна, поэтому при заборе органов необходимо соблюдать строжайшую стерильность: операции забора выполняют с соблюдением тех же правил асептики, что и обычные хирургические вмешательства. После извлечения из организма донора и промывания стерильными растворами орган помещают в специальный герметичный контейнер, где он находится до трансплантации в стерильных условиях.

Стерилизация медицинского инвентаря – длительная и трудоемкая процедура, без которой не может обойтись ни одна клиника. Указанная манипуляция проходит в три этапа, каждый из которых нуждается в особой внимательности и скрупулезности. С целью облегчения работы медиков и качественного уничтожения вредоносных микроорганизмов на сегодняшний день активно применяются стерилизационные медицинские приборы. Главные их достоинства – удобность и надежность.

Что должно обязательно стерилизоваться в медицинских учреждениях?

Рассматриваемый вид обработки применяется в отношении всех медицинских инструментов, контактирующих с раневой поверхностью, слизистыми покровами, кровью потерпевшего.

Указанный инструментарий состоит из следующих компонентов:

  1. Перевязочного материала.
  2. Лабораторной посуды: мензурок, стеклянных тонких трубочек, колбочек.
  3. Операционного белья.
  4. Иголок.
  5. Резиновых изделий, используемых в медицинских целях: катетеров, перчаток, зондов, дренажных трубок.
  6. Приспособлений, которые касаются поврежденных поверхностей организма.
  7. Мелких стоматологических инструментов: боров, каналонаполнителей, дрильборов.
  8. Приборов и аппаратуры для диагностических мероприятий.

Видео: Чистка и дезинфекция конвенциональных медицинских инструментов

Основные этапы стерилизации

Рассматриваемая процедура проводится в три этапа, последовательность которых должна соблюдаться в обязательном порядке:

1.Дезинфекция

Предусматривает ликвидацию вредоносных микроорганизмов в помещении, на инструментах и расходных материалах, которые используются в клиниках. При этом, дезинфицируют не только полы, стены и жесткую мебель, но также воздух, средства ухода за пациентами, санитарно-технические устройства и т.д.

  • Пребывание в больнице человека с инфекционным недугом – повод для проведения очаговой дезинфекции .
  • В целом же, еженедельно в операционных и манипуляционных кабинетах осуществляет генеральную уборку. Влажная уборка помещения осуществляется каждый день. Подобный комплекс мероприятий именуют профилактической дезинфекцией .

Исходя из назначения инвентаря, который вступает в контакт с кожным покровом, дезинфекция бывает трех видов:

  1. Низкого уровня . Показана для обеззараживания приспособлений, что контактируют с неповрежденной кожей. Основные средства данного вида дезинфекции – препараты, содержащие хлор, фенол, этиловый или изопропиловый спирт, а также йодофоры. Указанные препараты не способны уничтожать продукты размножения грибов и бактерий, а также мелкие вирусы не липидной природы. С остальной группой болезнетворных микрочастиц они справляются хорошо.
  2. Высокого уровня . Применяется для обработки медицинских приспособлений, которые используют для контакта с кровью, растворами для инъекций, кровеносными сосудами, чистыми тканями организма. Главными компонентами указанного вида дезинфекции являются 6-процентный раствор перекиси водорода, соединения альдегида и хлора, а также препараты, включающие надуксусную кислоту. Подобные средства устраняют все болезнетворные микрочастицы, кроме продуктов размножения грибков.
  3. Промежуточного уровня . Дает возможность справиться с крупными липидными вирусами, вегетативными формами бактерий. Нелипидные микровирусы, продукты размножения бактерий устойчивы к подобной очистке. Дезинфекцию промежуточного уровня применяют в отношении инструментов, которые вступают в контакт со слизистыми оболочками либо с рваными кожными покровами.

Дезинфекция осуществляется несколькими способами:

  • Механическим. Предусматривает протирание поверхностей влажной тряпкой, стирку операционного и постельного белья, обработку мебели и пола пылесосом. Кроме того, обязательным является регулярное проветривание всех помещений в клинике.
  • Биологическим. Для ликвидации тех или иных вредоносных микроорганизмов обращаются к бактериофагам. Указанные антагонисты обладают узким спектром действия, в связи с чем их используют в основном для дезинфекции помещения и твердых поверхностей.
  • Физическим. На объекты, которые подлежат обеззараживанию, воздействуют высокими температурами. Это может быть кипячение в растворе дистиллированной воды с содой, обработка паром, сухим воздухом. Данный метод не является опасным для сотрудников клиники и отличается своей надежностью.
  • Химическим. Наиболее популярный метод дезинфекции в медучреждениях. Может быть весьма агрессивным для тех, кто работает с химическими реагентами, поэтому изделия, подлежащие дезинфекции рекомендуется располагать на решетках в камерах. Суть рассматриваемой методики заключается в погружении мединвентаря в обеззараживающие химрастворы. Емкость, в которую заливают указанные препараты, должна быть изготовлена из пластмассы, стекла, либо покрыта слоем эмали. Сами дезсредства нужно хранить в плотно закрытых емкостях с указанием точного названия препарата, даты его изготовления и сроков применения. При работе с такими веществами медсестрам необходимо надевать респираторную маску, очки и перчатки. Помещение в это время должно вентилироваться либо проветриваться. Не допускается разбавлять те или иные химические растворы теплой/горячей водой: это спровоцирует усиленное испарение вредных для организма веществ.

Все средства химической дезинфекции, в силу своего состава, условно делятся на 7 групп:

  1. Кислородосодержащие препараты. Активным компонентом здесь выступает кислород. Наиболее ярким представителем данной группы является перекись водорода.
  2. Гуанидсодержащие средства. Хорошо справляются с ликвидацией множества разнообразных патогенных бактерий. Они представлены следующими изделиями: Гибитан, Лизетол АФ, Фогуцид и т.д.
  3. Галогеносодержащие вещества , основу которых составляют йод, хлор, а также бром.
  4. Поверхностно-активные вещества (ПАВы), что не приводят к образованию ржавчины на металлах со временем. Благодаря их свойствам возможно совмещать процедуру дезинфекции и предстерилазционной очистки.
  5. Спирты. Показаны для обработки рабочих поверхностей, медтехники, а также для кожных покровов.
  6. Препараты, содержащие янтарный или глутаровый альдегид . Эффективно справляются с бактериями, вирусами, спорами, макроорганизмами.
  7. Средства на основе фенола. Зачастую их применяют для очищения помещений, где находятся больные туберкулезом.

Загрязненный рабочий инвентарь сразу после применения погружают специальную емкость, которая залита химическим обеззараживающим раствором. Высота жидкости над уровнем инструмента должна составлять не менее 1 см. При значительных загрязнениях очистку осуществляют дважды. Дезинфекция заканчивается промывкой медицинского инвентаря под проточной водой. Если присутствуют загрязнения на данном этапе, их устраняют механически, посредством ерша, салфетки либо щетки.

2. Предстерилазационная очистка (ПСО)

Она необходима для качественной обработки инструментария, который контактирует с раневыми поверхностями, слизистыми оболочками.

Указанные приспособления предварительно разбирают и погружают в емкость с заранее приготовленным раствором. Для подобной методики изготавливают специальные растворы — или же применяют уже готовые дезинфектанты. В первом случае используют воду, перекись водорода, а также моющие препараты.

Качество очищения мединструмента оценивают путем проведения специальных проб на трех единицах изделий.

3. Непосредственная стерилизация

Является обязательной методикой обработки инструментов, которые соприкасаются с чистыми тканями организма, кровеносными сосудами, а также кровью.

Полная стерилизация осуществляется при помощи стерилизаторов – специального оборудования.

Различают три основных методики стерилизации:

1) Термическая

Подразделяется на:

  • Паровую , с применением автоклава. Обеззараживание достигается путем воздействия пара под избыточным давлением. Возбудители болезни здесь начинают гибнуть уже при температуре 120С. Указанная процедура может длиться от 15 минут до 1 часа. Время очистки зависит от материала, из которого изготовлено изделие и степени его загрязнения.
  • Воздушную , при помощи сухожарового шкафа. Используется для обеззараживания предметов, которые в следствие специфической структуры не могут поддаваться воздействию газов и паров. Вредоносные микроорганизмы в таких устройствах ликвидируются под влиянием высоких температур (180 С).
  • Микроволновую . Подходит для очистки небольшого количества хирургического либо лабораторного инвентаря. Принцип стерилизации заключается в помещении объектов в условия частичного вакуума, и воздействии на них микроволнами. Подобная манипуляция занимается всего 30 секунд.
2) Химическая

Бывает нескольких видов:

  1. Плазменная. Предусматривает использование 20-процентного пероксида водорода.
  2. Стерилизация озоном. Длится около 60 минут.
  3. Очистка с применением паров химических соединений. Для подобных целей могут использоваться:
  • Окись этилена с бромистым метилом: для стерилизации резиновых, стеклянных, металлических, полимерных изделий, а также медоптики, кардиостимуляторов. Для подобного способа обеззараживания используют газовый стерилизатор.
  • Пары формальдегида и воды. При температуре 75С в стационарном формалиновом стерилизаторе на протяжении 5 часов обрабатывают инвентарь из резины, стекла, металла, полимера.
3) Радиоактивная

Основана на принципе трансформации ионной энергии в химическую и тепловую. Это благоприятствует разрушению ДНК возбудителей болезней, что останавливает процесс размножения патогенных микрочастиц, и полностью прекращает их существование.

Данный метод зачастую используют в заводских условиях, в ходе массового выпуска медицинского инвентаря (к примеру, разовые шприцы).

Видео: Процесс дезинфекции и стерилизации медицинских инструментов


Все методы стерилизации инструментов, перевязочного материала и т.д. в медицине сегодня – необходимая аппаратура

На сегодняшний день, в медицинской практике чаще всего применяют стерилизаторы, которые производят очистку посредством горячего воздуха, либо пара.

Каждый из них имеет свои недостатки и преимущества.

  1. Сухой метод стерилизации негативно влияет на прочность стекла и металла. Страдают также мелкие стоматологические приспособления: при воздействии на них температурами свыше 160 С они притупляются и становятся хрупкими. Еще одним негативным моментом рассматриваемого вида обеззараживания является невозможность контролировать качество очистки предметов.
  2. На сегодняшний день наиболее оперативным и качественным средством обеззараживания является паровая методика . С ее помощью можно обрабатывать инструменты, которые чувствительны к высоким температурам. Посредством указанных приборов медицинские изделия проходят все три этапа стерилизации. Пар для стерилизации в автоклаве вырабатывается посредством кипячения воды в котле. В стерилизационную камеру, куда помещают загрязненные предметы, поступает указанный пар. С целью поддержания нормального давления предусмотрен предохранительный клапан. Кроме того, автоклав укомплектован манометром и термометром для измерения соответственно давления паровой массы и температуры.

Современные автоклавы бывают трех классов:

  • Оборудование класса N. Хорошо справляется с очищением неупакованных материалов из ткани, а также со сплошным гладким медицинским инвентарем.
  • Устройства класса S. Могут применяться для обеззараживания объектов из ткани, что упакованы, а также для пористых и гладких инструментов.
  • Автоклавы класса В. Являются универсальным прибором для стерилизации, так как подходят для любого медицинского инвентаря. Они особенно популярны в стоматологических клиниках.

C целью облегчения и ускорения процесса стерилизации, рынок медицинских товаров предлагает следующее оборудование:

  1. Приборы для тщательной упаковки инвентаря перед проведением стерилизации.
  2. Моечные аппараты для дезинфекции . Помогают избавиться от видимых загрязнений. Их главная цель – предстерилизационная обработка медицинских инструментов.
  3. Дистилляторы. Актуальны для медицинских учреждений, которые активно практикуют автоклавы, — для паровой очистки применяют дистиллированную воду.

Асе́птика - комплекс мероприятий, направленных на предупреждение попадания микроорганизмов в рану.

Асептика обладает несомненными преимуществами перед антисептикой в смысле результатов лечения, а также потому, что при асептическом способе лечения ран не бывает отравлений, которые возможны при применении некоторых антисептических средств.

Основное правило асептики заключается в том, чтобы все, что соприкасается с раной, было стерильно, т. е. надежно обеззаражено, свободно от жизнеспособных бактерий.

Стерилизация - это освобождение объектов внешней среды от различных микроорганизмов с помощью физических и химических способов (обеззараживание, обеспложивание). Технология стерилизации включает следующие этапы: дезинфекция, очистка материала, помещение его в контейнеры и стерилизаторы, собственно стерилизация, оценка ее эффективности и хранение стерильного материала. Различают стерилизацию паровую (водяным паром поддавлением), воздушную (горячим воздухом) и газовую (стерилизующим газом), химическую, лучевую (ионизирующим излучением, ультрафиолетовыми лучами).

Паровой метод:

для стерилизации перевязочного материала, белья, инструментов:

2,1 АТМ (температура пара - 132,9° С) - 20 минут. 1,1 АТМ (температура пара - 120° С) - 45 минут (многоразовые шприцы, стекло).

для стерилизации резиновых изделий: 1,1 АТМ (температура пара - 120° С) - 45 минут (каждые 5 мин. продувка).

Воздушный метод:

Для стерилизации стекла, инструментов Сухожаровой шкаф (темп. воздуха - 180° С) - 60 мин. Сухожаровой шкаф (температура воздуха - 160° С) - 150 мин.

Растворами химических соединений (инструменты, эндоскопы): 6% перекись водорода - 6 часов; лизоформин 3000 8% - 1 час;



сайдекс 2% - 10 час; глутаровый альдегид 2,5% - 6 часов.

Газовый метод (стоматологические, хирургические инструменты, иглы для рефлексотерапии и т.д.): окись этилена; формальдегид

Операционное белье и материал (салфетки, бинты, перчатки, шовный материал и др.) стерилизуются и хранятся в специальных коробках-барабанах (биксы Шиммельбуша). Крупные биксы бывают двух типов: без фильтра (с боковыми отверстиями, перекрывающимися металлической лентой-поясом с натяжным замком) и с фильтром (с отверстиями в дне и крышке коробки, перекрытыми текстильными фильтрами - мадеполам, фланель и др.).

К перевязочному материалу относятся салфетки, марлевые шарики, тампоны, турунды, биксы; к операционному белью - халаты, простыни, полотенца, маски, шапочки, бахилы.

После подготовки перевязочный материал и операционное белье укладываются в биксы или в полотняные мешки. После стерилизации срокхранения перевязочного материал а и белья в биксах - 48 ч, в мешках - 24 ч (если они не вскрывались).

Неинфицированные инструменты моются проточной водой в течение 5 мин и замачиваются в теплых (до 50 °С) моющих растворах на 15-20 мин. Примерные составы моющих растворов: пергидроль 20 г, стиральный порошок 5 г, вода - 975 мл; 2,5% раствор перекиси водорода - 200 мл, стиральный порошок 5 г, вода - 775 мл. Инструменты моются в таком растворе ершиком и щетками, прополаскиваются теплой водой 5 мин и дистиллированной - 1 мин. Затем в суховоздушном стерилизаторе при температуре 85 °С высушиваются.

Инструменты, загрязненные гноем или кишечным содержимым, помещаются в эмалированные емкости с 0,1% раствором диоцида или 5% раствором лизола на 30 мин. Затем моются в этом же растворе щетками, ополаскиваются проточной водой и далее по изложенной методике для неинфицированных инструментов. Специальной обработке подвергаются инструменты, контактировавшие с анаэробной инфекцией (замочка на 1 ч в 6% растворе перекиси водорода с 0,5% раствором моющего средства, обмывание и кипячение в течение 90 мин, затем - по вышеизложенной методике.

Стерилизация шовного материала может быть проведена в заводских условиях гамма-излучением.

Ампулированные мотки кетгута, шелка, капрона и других нитей хранятся при комнатной температуре и используются при необходимости.

Льняные и хлопчатобумажные нити,лавсан, капрон стерилизуются в автоклаве. Шелк, капрон, лавсан, хлопок стерилизуют также по методу Кохера.

Кетгут стерилизуют после обезжиривания (замачивание в эфире на 24 ч) по методам Клаудиуса (с использованием раствора Люголя и 96% раствора спирта), Губарева (раствора Люголя), Ситковского (в 2% растворе йодида калия) и др.

Контроль за стерильностью медицинских изделий осуществляется бактериологическими лабораториями лечебно-профилактических учреждений и санэпидслужбы.

Классификация хирургического инструментария. Хранение инструментов. Подготовка инструментов к работе. Техника накрывания перевязочного стола в перевязочной. Контроль стерильности инструментов.

Хирургические инструменты можно разделить на инструменты общего назначения и специальные инструменты.

1. Для разъединения тканей : скальпели, ножи, ножницы, пилы, долота, остеотомы, кусачки и др. К режущим инструментам относятся также резекционные ножи, применяемые для разрезания плотных сухожильных тканей вблизи суставов, и ампутационные ножи.

2. Вспомогательные инструменты (расширяющие, фиксирующие и др.: пинцеты анатомические и хирургические; тупые и острые крючки; зонды; большие расширители раны (зеркала); корнцанги, зажимы Микулича и др.

3. Кровоостанавливающие : зажимы (типа Кохера, Бильрота, Холстеда, «Москит» и др.) и лигатурные иглы Дешана.

4. Инструменты для соединения тканей : иглодержатели разных систем с колющими и режущими иглами.

Используемые при манипуляциях хирургические инструменты должны быть стерильными.

Хирургические инструменты передают из рук в руки тупыми концами в сторону принимающего, чтобы режущие и колющие части не травмировали рук. При этом передающий должен держать инструмент за середину.

Большинство хирургических инструментов изготавливается из хромированной нержавеющей стали.

Обработка инструментов

Этап I - предстерилизационная подготовка. * Моют в проточной воде в течение 5 минут.* Замачивают в специальном моющем растворе при температуре 50?C на 15 – 20 минут. Моющий раствор: 0,5 % порошок, 1 л воды, перекись 3 %.* Моют в том же растворе щеткой. * Ополаскивают в течение 5 минут теплой водой. * Прополаскивают в дистиллированной воде 1 минуту.* Проба на порошок - фенолфталеиновая. * Проба на кровь - бензидиновая.

Этап II - укладка и подготовка к стерилизации. В сухожаровом шкафу: Помещают в металлические коробки, укладывая вертикально в один слой. Крышки от коробок стерилизуют рядом.В автоклавах: Заворачивают в вафельное полотенце в виде пакета и укладывают на металлический поднос или сетку.

Этап III - стерилизация. В сухожаровом шкафу стерилизуются инструменты, стеклянная посуда:* Укладывают на полки. * Включают подогрев. * Доводят до 80 – 85?C при открытой дверце. * Просушивают 30 минут. * Закрывают дверцу.* Доводят до 180 0 C. * Стерилизуют 1 час. * После снижения температуры до 70 – 75 0 C открывают дверцу.* Стерильным инструментом закрывают металлические коробки с инструментами крышкой. * Спустя 15 – 20 минут камеру разгружают.

В автоклаве стерилизуются инструменты, системы, перчатки. Инструменты: при 2 атм. - 20 минут, 132 є.

Этап IV - хранение стерильного материала. Хранят в отдельном помещении. Стерильность в биксах - 48 часов. Если инструменты, обернутые в материал, стерилизовались в биксах - 3 суток.

Перевязочная сестра получает список всех перевязок на день, устанавливает их очередность. В первую очередь перевязывают больных с гладким послеоперационным течением (снятие швов), затем с гранулирующими ранами. Убедившись в готовности перевязочной, сестра приступает к обработке рук.
Предварительно она надевает операционную форму, тщательно прячет волосы под косынку или шапочку, коротко подстригает ногти, надевает маску. После обработки рук сестра одевается. Она берет из бикса халат, не касаясь им краев бикса. Осторожно развернув его на вытянутых руках, она надевает его, завязывает тесемками рукава халата и прячет тесемки под рукав. Открывает биксы и завязывает сзади тесемки халата санитарка перевязочной. После этого сестра надевает стерильные перчатки и накрывает инструментальный стол. Для этого она достает из бикса стерильную простыню и стелет ее, сложенную вдвое, на инструментальный стол. Санитарка открывает стерилизатор, крючками извлекает из стерилизаторов сетки с инструментами, дав стечь воде, ставит осторожно сетки на угол инструментального стола, покрытого простыней. При стерилизации воздушным способом в крафт-бумаге медсестра должна выяснить предварительно дату стерилизации. Изделия, простерилизованные в крафт-бумаге, могут храниться не более 3-х суток.
Инструменты следует раскладывать в определенном порядке, который перевязочная медсестра выбирает сама. Обычно инструменты раскладывают на левой стороне стола, перевязочный материал - на правой стороне, в середине размещают специальные инструменты и дренажные трубки. Здесь же сестра ставит стерильные банки для новокаина, перекиси водорода, фурацилина. Правый угол сестра оставляет свободным для приготовления наклеек и повязок во время перевязки. Простыней, сложенной вдвое, сестра закрывает инструментальный стол. Подготовительная работа должна быть закончена к 10 ч

Этап 1 —подготовка материала.

Перевязочный материал должен легко стерилизоваться и не терять при этом своих свойств. Его готовят из марли и ваты, реже из вискозы и лигнина. Для работы из них готовят шарики, салфетки, тампоны, турунды, бинты. Марля должна складываться так, чтобы не было свободного края, из которого могут осыпаться волокна ткани. Материал заготавливают впрок, пополняя его по мере расходования. Перед стерилизацией его укладывают следующим образом: шарики – в марлевые мешочки по 50—100 штук, салфетки связывают по 10 штук.

В качестве операционного белья используют хирургические халаты, простыни, пелёнки, полотенца, шапочки, бахилы. Их изготавливают из хлопчатобумажной ткани. Халаты, простыни, пеленки, полотенца для стерилизации складываются в виде рулонов, это позволяет легко развернуть их при использовании.

Перевязочный материал после его использования сжигается. Белье многократного применения стирается, но отдельно от других видов белья.

Этап 2 – укладка материала.

Перевязочный материал и операционное белье стерилизуют в биксах. Применяют три вида укладки бикса:

Универсальная укладка

Целенаправленная укладка

Видовая укладка

Универсальная – укладывают материал и белье для одной небольшой, типичной операции. Этот вид укладки используют при работе в перевязочных и при малых операциях. Укладку производят по секторам. Бикс делят на секторы, которые заполняются определенным видом материала или белья: в один сектор помещаются салфетки, в другой – шарики, в третий – тампоны и т. д.

Целенаправленная – укладывают материал и белье для определенной операции. Например, для аппендэктомии, резекции желудка. В бикс укладывается набор перевязочного материала и белья, необходимый для осуществления операции.

Видовая – укладывают определенный вид материала или белья.

Этот вид укладки применяют в операционных, где выполняется большое количество различных операций. Укладка осуществляется следующим образом – в один бикс хирургические халаты, в другой – простыни, в третий – салфетки и т. д.

Укладку бикса осуществляют следующим образом.

Проверяют исправность бикса. Протирают дно, стенки, крышку бикса вначале изнутри, а затем снаружи 0,5 % нашатырным спиртом. На боковой стенке бикса круговую пластинку (поясок герметичности), сдвигают так, чтобы открыть боковые отверстия. Бикс выстилается сложенной вдвое простыней, при этом концы её должны свисать наружу. На дно бикса кладут индикатор контроля стерильности. Перевязочный материал и белье укладывают в бикс рыхло, вертикально, по секторам или послойно. Каждый предмет кладут так, чтобы легко было достать, не нарушая укладку. В середину бикса кладут ещё индикатор контроля стерильности. Края простыни выстилающей бикс заворачивают один на другой. Сверху ближе к замку бикса кладут еще один контрольный индикатор. Закрывают крышку бикса на замок. К ручке бикса крепят бирку – паспорт.

Этап 3 – стерилизация. Перевязочный материал и белье стерилизуют автоклавированием при стандартных режимах.

Этап 4 – хранение стерильного материала. Боковые отверстия простерилизованного бикса должны быть закрыты. Биксы со стерильным материалом хранятся отдельно от биксов с нестерильным. После стерилизации хранить не вскрытый бикс можно 3 суток, после вскрытия 1 сутки. Неиспользованные биксы подвергаются повторной стерилизации.

ПРОВЕРКА КАЧЕСТВА СТЕРИЛИЗАЦИИ

Контроль за стерильностью может проводиться прямым и непрямым (косвенным) способами. Прямой способ – бактериологический, проводится посев со стерильных предметов. Его производят следующим образом: в операционной вскрывается бикс, маленькими кусочками марли, увлажненной изотоническим раствором хлорида натрия, несколько раз проводят по белью, после чего их опускают в пробирку. Взятый таким образом материал направляют на бактериологическое исследование. Бактериологический контроль проводят один раз в 10 дней. Он является самым надежным методом контроля стерильности.

Для непосредственного контроля стерильности материала применяются непрямые способы. Благодаря им можно оценить качество стерилизации каждого бикса. Непрямые методы основаны на закладывании в стерилизуемые биксы термоиндикаторов, которые показывают, прошел ли стерилизуемый материал определенный температурный режим. Для индикаторов используют вещества с определенной точкой плавления: бензойную кислоту (120°С), мочевина (132°С), тиомочевину (180°С). Их помещают в ампулы. Индикаторы закладывают вместе со стерилизуемыми предметами. Расплавление порошка и превращение его в сплошную массу свидетельствует, что температура стерилизации была равна точке плавления контрольного вещества или превышала ее.

ОБРАБОТКА РУК

Целью хирургической дезинфекции рук является надежное освобождение их от микроорганизмов на длительный срок. Подготовка рук хирурга и его помощников к операции сопряжена с большими трудностями, в связи с невозможностью использовать для этого высокую температуру и концентрированные растворы антисептиков. Особое затруднение вызывает обеззараживание рук от микробов, скапливающихся в выводных протоках сальных, потовых желез и в волосяных мешках. В связи с этим наряду со смыванием бактерий и уничтожением их на поверхности кожи антисептиками все методы включают как обязательный компонент дубление кожи, чтобы сузить поры и воспрепятствовать проникновению микробов на ее поверхность во время операции.

Принцип хирургической дезинфекции рук – сначала механическая очистка, а затем дезинфекция. Кисти и предплечья предварительно обрабатывают в течение 2-5 минут мылом и щеткой. Особое внимание уделяют обработке ногтевых лож и складок кожи, межпальце- вых промежутков. После этого руки споласкивают и вытирают стерильными салфетками. На заключительном этапе используют дезинфицирующие средства. Которые должны отвечать следующим требованиям:

  • быстро убивать патогенную микрофлору.
  • надежно убивать микробы в перчаточном соке, чтобы руки оставались обеззараженными в течение всей операции.
  • обладать кумулятивным действием, чтобы руки хирурга оставались обедненными микроорганизмами и в промежутках между процедурами дезинфекции.
  • не оказывать раздражающего действия на кожу.

Метод Спасокукоцкого – Кочергина.

Вначале руки моют под краном горячей водой, смывая “трамвайную грязь” (выражение акад. С. И. Спасокукоцкого). После мытья мылом и теплой водой руки моют в течение 6 минут, (2 раза по 3 минуты) в двух тазах в 0,5 % растворе аммиака, пользуясь как мочалкой, так и марлевой стерильной салфеткой. Тазы перед наливанием растворов обжигают спиртом. После такого мытья руки насухо вытирают стерильным полотенцем и протирают марлевым шариком или небольшой салфеткой, обильно смоченной 96 % этиловым спиртом. Затем многие хирурги смазывают ногтевые ложа с складки кожи на тыльной поверхности сгиба пальцев 5 % спиртовым раствором йода (йодоната). Хотя сами авторы метода этого не рекомендовали. Однако опыт показывает, что такое дополнение вреда не приносит, а создает больше уверенности в дублении кожи.

Метод Альфельда принадлежит к числу старейших методов, предложенных для обработки рук. Руки моют мылом и щетками под краном в течение 10 минут. Начинают с обычного мытья рук мылом и теплой водой, после чего берут корцангом стерильную щетку и, намылив ее, приступают к систематической обработке кистей и предплечий. Последовательно, начиная с 1 пальца, протирают щеткой пальцы, не пропуская ни одного миллиметра поверхности кожи, тщательно обрабатывают лодногтевые пространства, ногтевые валики и складки кожи кисти, переходят на предплечье. Обрабатывают вплоть до локтевого сгиба. Руки держат так, чтобы вода стекала от кистей к предплечьям. На каждую руку затрачивают по 2 минуты, после чего смывают мыло теплой проточной водой, и, взяв поданную медсестрой или санитаркой вторую стерильную щетку, повторяют процедуру последовательной обработки повторяют процедуру последовательной обработки пальцев, кистей и нижней трети предплечья, затрачивая на это еще 5 минут. Смывают мыло тепло проточной водой и вытирают руки стерильным полотенцем или салфеткой. Сухие руки протирают салфеткой, обильно смоченной 96 % спиртом, в течение 3 минут и смазывают ногтевые ложа спиртовым раствором йода.

Обработка рук раствором перекиси водорода и муравьиной кислоты. Рецепту ру “С-4” готовят в день операции из необходимого количества 30-33 % перекиси водорода (пергидроля) и 85-100 % муравьиной кислоты, которые смешивают в стерильном сосуде в соотношении 1:2.4 и хранят не более суток в посуде с герметической пробкой в прохладном месте. Для обработки рук используют 2,4 % раствор рецептуры “С-4”.

Перед обработкой рук раствором рецептуры “С-4” их моют водой с мылом (без щетки) в течение 1 минуты, вытирают насухо стерильной салфеткой, затем руки обрабатывают в течение 1 минуты рецептурой “С-4” в эмалированном тазу. Вытирают стерильной салфеткой и надевают стерильные перчатки.

Обработка рук хлоргексидин биглюконатом. Для обработки рук используют 0,5 % спиртовой раствор препарата (препарат разводят в 70 % спирте в соотношении 1:40). После предварительного мытья рук с мылом и последующего протирания стерильной марлевой салфеткой производят их обработку двумя ватными тампонами, смоченными в 0,5 % спиртовом растворе хлоргексидина в течение 2-3 минут.

Обработка рук дегмином и дегмицидом. Руки перед обработкой дегмином или дегмицидом моют теплой водой с мылом в течение 2-3 минут, тщательно ополаскивают их и протирают двумя тампонами, обильно смоченными 1 % раствором препарата, по 3 минуты каждым. После этого стерильными салфетками вытирают руки насухо и надевают стерильные перчатки.

Обработка рук церигелем. Препарат содержит цетилпиридиний хлорид – катионный детергент, обладающий большой поверхностной активностью. Бесцветная, опалисцирующая жидкость церигеля, нанесенная на кожу, после испарения спирта образует тонкую асептическую полимерную пленку (воздействие поли винил бутираля).

После предварительной обработки рук мылом на сухую кожу наносят 3-4 г церигеля и в течение 8-10 с тщательно растирают так, чтобы препарат покрыл ладонные и тыльные поверхности, меж- пальцевые промежутки и дистальную треть предплечья. Руки высушивают на воздухе или под вентилятором в течение 2-3 минут, следя за тем, чтобы пальцы не соприкасались и были слегка согнуты. Способ обработки рук эффективен в экстренных ситуациях, во время работы в перевязочной, при первичной хирургической обработке ран и т. д., полимерная пленка смывается с рук после операции или манипуляции 95 % этиловым спиртом.

Обработка рук йодофором. Очень эффективным и быстрым способом является обработка йодофором (1 % йодопирон- поливинилпиролидон, повидон-йодин-бетадин) и гексахлорофеном в мыльном растворе (шампунь) в течение 3-5 минут. Одновременно достигается очистка и дезинфекция рук, после чего их высушивают салфеткой и надевают стерильные перчатки.

Обработка рук ультразвуком. Сконструированы специальные аппараты с ультразвуковыми ваннами, в которых мытье и дезинфекция рук происходит в течение 1 минуты. Руки погружают в раствор антисептика (0,5 % водный раствор гибитана), через который пропускаются ультразвуковые волны, которые и обеспечивают дезинфекцию.

Обработка рук роккалом. Роккал – поверхностно-активное вещество, обладающее моющим и дезинфицирующим действием. Выпускается в баллонах разной вместимости в 10 % и 1 % растворе, прозрачная желтоватая жидкость.

Руки, предварительно вымытые с мылом, хорошо ополаскивают и погружают в таз с раствором роккала 1:1000 на 2 минуты. Для разведения роккала пользуются только дистиллированной водой.

Обработка рук йодопироном. Руки моют в проточной воде с мылом в течение 1 минуты и вытирают стерильной салфеткой, затем руки погружают в таз с 1 % раствором йодопирона и моют в течение 4 минут стерильной марлевой салфеткой.

Обработка рук хибискрабом. Руки смачивают водой до локтей и наносят 5 мл хибискраба, моют в течение 1 минуты. Затем руки тщательно смываются и повторно применяют 5 мл хибискраба и моют руки в течение 2 минут. Дезинфектор смывается стерильным физиологическим раствором.

Обработка рук препаратом СЕПТОЦИД Р ПЛЮС.

Моют руки водой с мылом, предпочтительно жидким (рН- нейтральный), без использования жестких щеток. Высушивают стерильной разовой салфеткой или полотенцем. Обрабатывают ногтевые ложа, околоногтевые валики одноразовыми стерильными деревянными палочками, смоченными антисептиком. Продолжительность не менее 1 мин. Наносят антисептик на кисти рук и предплечья порциями по 2,5-3 мл. Расход на одну обработку – 10 мл.

Втирают антисептик в кожу рук, не допуская высыхания. Продолжительность обработки 5 мин.

НАДЕВАНИЕ ОПЕРАЦИОННОЙ ОДЕЖДЫ

Медицинский персонал (хирург, ассистенты, операционные сестры) после хирургической дезинфекции рук надевают стерильные (свободные от микроорганизмов) халаты. Для операционных хататов не подходит рыхлый текстильный материал, многократно бывший в употреблении, т. к. он становится проницаемым для пота и бактерий, содержащихся на коже членов операционной бригады (появляются на халате уже через 30 минут работы). Лучше всего использовать белье и халаты из плотного импрегнированного хлопчатобумажного материала, Манжеты и завязки должны быть эластичными и не сдавливать запястья и кисти. Маска должна плотно закрывать рот и нос.

После хирургической дезинфекции рук микроорганизмы на коже отсутствуют. Однако, вскоре из протоков потовых желез, волосяных мешочков, микротрещин на поверхности кожи снова появляются микроорганизмы, поэтому с целью асептического проведения операции необходимо изолировать руки стерильными резиновыми перчатками.

При надевании перчаток нельзя притрагиваться к их наружной поверхности оголенной рукой.

Во время работы в перчатках руки становятся влажными, там скапливается так называемый перчаточный сок, который содержит концентрат вирулентной микрофлоры, поэтому и перед операцией и во время ее необходимо обращать пристальное внимание на целостность перчаток. Поврежденную перчатку необходимо тотчас же сменить. Если операция продолжительная, во время работы через каждые 45-60 минут перчатки обрабатывают 2,4 % первомура и протирают 96 % этиловом спиртом. Обработку перчаток необходимо проводить также после каждого этапа операции, предусматривающего вскрытие полого органа.

ОБРАБОТКА ОПЕРАЦИОННОГО ПОЛЯ

Подготовка операционного поля начинается в предоперационном периоде (гигиеническая ванна, очистка загрязнений эфиром или бензином, обработка кожи зеленым или калиевым мылом, бритье волос в области операционного поля). Накануне операции больной принимает ванну, ему меняют белье. Утром, в день операции, волосы в области операционного поля тщательно обривают. Для бритья следует применять острые бритвы, не вызывающие раздражения кожи. После бритья кожу протирают спиртом. Волосяной покров в области предстоящего оперативного вмешательства можно также удалять с помощью специального крема-депилятора. Это обеспечивает удобство при обработке кожи в зоне складок и уменьшает опасность микроповреждений, что наблюдается при обработке лезвием бритвы.

Классический метод обработки операционного поля по методу Гроссиха-Филончикова – смазывание 5 % спиртовым раствором йода сейчас не применяется. Для обработки кожи операционного поля в настоящее время чаще всего используют йодонат, йодопирон, 0,5 % спиртовой раствор хлоргексидина биглкжоната

Основные правила обработки операционного поля:

  1. Производить обработку широко.
  2. Обработку производить от центра к периферии.
  3. Более загрязненные участки обрабатывать в последнюю очередь.
  4. Обработка производится многократно.

Первый раз смазывают операционное поле перед наложением стерильного белья, второй – после наложения белья, третий – перед зашиванием кожи и четвертый раз – после наложения швов на кожу. Как показали многочисленные исследования, йод дубит кожу и, проникая в глубину складок и пор, дезинфицирует ее.

Для обработки операционного поля используются и другие антисептические вещества (1 % раствор дегмицида, 1 % раствор роккала или катамина А-Б, 2,4 % раствор первомура). Для дезинфекции слизистых их смазывают 1 % раствором бриллиантового зеленого, 3 % раствором перекиси водорода, 1 % раствором йодоната или йодопирона, а также 0,5 % спиртовым раствором гибитана.

Для изоляции кожи операционного поля можно применять специальную стерильную пленку (протектор).

ПРОФИЛАКТИКА ИМПЛАНТАЦИОННОЙ ИНФЕКЦИИ

Предупреждения им плантационного инфицирования достигается обеспечением строжайшей стерильности всех предметов, внедряемых в организм больного.

Особенностью имплантационного пути является то, что в 100 % случаев инфицирование приводит к развитию гнойновоспалительного процесса. Инородные тела оставляемые в тканях при этом длительно поддерживают воспалительный процесс. В некоторых случаях может происходить инкапсуляция инфицированных имплантантов, при этом микроорганизмы не погибают, и могут стать источником вспышки гнойного процесса в отдаленном послеоперационном периоде. Образуется источник дремлющей инфекции.

Источники имплантационной инфекции.

  • шовный материал
  • эндопротезы
  • металлические конструкции (скобки сшивающих аппаратов, винты, спицы, шурупы, пластинки для остеосинтеза),
  • специальные приспособления (кавафильтры, спирали, стен- ты и пр.)
  • трансплантированные органы и ткани.

СТЕРИЛИЗАЦИЯ ШОВНОГО МАТЕРИАЛА

Хирургический шовный материал должен быть стерильным, прочным на разрыв и хорошо переноситься тканями, а после выполнения своей фиксирующей функции по возможности рассасываться. В настоящее время имеется много видов шовного материала. Его принято разделять на материал естественного и искусственного происхождения. Шовный материал естественного происхождения: шелк, хлопчатобумажная нить и кетгут. Искусственный шовный материал изготавливается из синтетических химических веществ: капрон, лавсан, фторлон, полиэстер, дакрон и пр.

Стерилизация шовного материала достигается разными способами: термическим, химическим, гамма-облучением.

Стерилизация шелка.

Метод Кохера. Мотки шелка моют в теплой воде с мылом, затем высушивают. Намотанный на катушку шелк спускают в эфир на 12-24 часа для обезжиривания. После извлечения стерильным инструментом из эфира шелк погружают на тот же срок в 70 % этанол. После извлечения из спирта шелк кипятят 10-20 минут в растворе сулемы 1:1000. Хранят стерильный шелк в герметических закрытых банках с 95 % этиловым спиртом. Через двое суток проводят бактериологический контроль. Если посев будет стерильным шелк можно применять. В герметических банках спирт меняется через каждые 7 дней.

Стерилизация кетгута. Кетгут является материалом органического происхождения. Изготавливают кетгут из подслизистого слоя тонких кишок крупного рогатого скога или свиней. Как гетерогенный белок, он может вызвать сильную реакцию тканей. Преимуществом кетгута является то, что через 6-12 дней он резорбцируется в организме. За счет хромирования (хромированный кетгут) резорбция кетгута в организме может быть продлена до 15-40 дней. Задубленный кетгут не токсичен. Хромированный кетгут выпускается в ампулах или в упаковке из алюминиевой фольги с консервирующим раствором (спирт ректификат 96 % – 89 мл, глицерин 6 мл, бензин авиационный 1 мл, вода дистиллированная 4 мл), его стерилизуют гамма-облучением

Сухой способ стерилизации нитей кетгута в парах йода (по Ситковскому). Кетгут опускают в эфир на 12-24 часа. Стандартную нить кетгута разрезают на три части и тщательно протирают марлевым тампоном, смоченным в растворе дихлорида ртути 1:1000. Нити, обработанные сулемой, опускают в 2 % водный раствор йодида калия. Это делает кетгут восприимчивым к парам йода. Экспозиция в этом растворе определяется толщиной нити (все нулевые номера – на 30 сек., а остальные – на число минут, соответствующее номеру нити). Кетгут сматывают в колечки, нанизывают на длинные нити и в два ряда подвешивают в стерильную стеклянную банку с притертой крышкой. Расстояние кетгута от дна банки – 60-70 мм. На дно банки предварительно насыпают кристаллический йод, обязательно учитывая величину банки и сохраняя необходимую концентрацию паров йода. Расчет 20 пакетов сухого кетгута: в банку емкостью 3 л – 40 г йода, в банку емкостью 5 л – 60 г йода. Пробку банки заливают парафином (поверх стерильной марлевой салфетки). Ежесуточно банку встряхивают для обеспечения свободного доступа паров йода во все промежутки между кетгутом. Кетгут тонкий (№ 0-1) готов через 3 суток, № 2,3, 4 – через 4 суток, № 5 и 6 – через 5 суток. По истечении срока стерилизации кетгут перекладывают в сухую стерильную банку, беря в это время посев на стерильность.

Способ стерилизации нитей кетгута спиртовым люголев- ским раствором (по Губареву). Сухие нити кетгута не длиннее 1 м свертывают в колечки и заливают эфиром на 12-24 часа. Эфир сливают. Кетгут заливают на 8-10 суток спиртовым люголевским раствором (спирт 96 % – 1000 г, йодид калия – 10 г, чистый йод – 10 г). Кетгут повторно заливают свежим люголевским раствором еще на 8-10 суток. На 16-20 сутки от начала стерилизации кетгут подвергают бактериологической проверке и при благоприятных результатах разрешают им пользоваться. Хранят кетгут в люголевском растворе, меняя его каждые 7-10 суток.

Способ стерилизации нитей кетгута в водном люголевском растворе (по Гейнац-Клаудиусу). Сухие нити кетгута не длиннее 1 м свертывают в колечки и заливают эфиром на 12-24 часа. Эфир сливают, и кетгут заливают на 8-10 суток водным люголевским раствором (дистиллированная вода – 1000 г, йодид калия – 20 г, чистый йод – 10 г). Через 8-10 суток водный люголевский раствор заменяют свежим и снова оставляют в нем кетгут на 8-10 суток. Через 16-20 суток от начата стерилизации раствор сливают и кетгут заливают 96 % этиловым спиртом на 4-6 суток, после чего берут посев на стерильность. Хранят кетгут в 96 % спирте, который меняют каждые 7-10 дней.

Каждую порцию кетгута подвергают обязательному бактериологическому контролю. Посев берут из каждой банки от разных нитей кетгута в 6 пробирок: 3 на бульон и 3 на среду Тароцци. Результаты лабораторных исследований бережно сохраняют. На банку с кетгутом, допущенную к употреблению, наклеивают этикетку с указанием номера кетгута, даты начала и конца стерилизации, даты и номера бактериологического анализа.

Стерилизация капрона. Капрон можно стерилизовать кипячением в течение 20 минут.

Стерилизация лавсана. Лавсановые нити могут стерилизоваться автоклавированием, кипячением, а также раствором диоцида (1:1000-1:5000).

Большинство видов современного шовного материала стерилизуется в заводских условиях гамма-облучением.

Контроль за стерильностью шовного материала осуществляется бактериологическим методом.

СТЕРИЛИЗАЦИЯ КОНСТРУКЦИЙ, ПРОТЕЗОВ, ТРАНСПЛАНТАТОВ

Способ стерилизации различных конструкций и протезов зависит от вида материалов, из которого они изготовлены.

Металлические конструкции стерилизуются в автоклаве, сухожаровом шкафу или кипячением.

Тканевые протезы стерилизуют кипячением или в газовом стерилизаторе.

Протезы сложных конструкций стерилизуются химическими способами в газовом стерилизаторе или химическими антисептиками.

В настоящее время большинство протезов выпускается просте- рилизованными в заводских условиях гамма-облучением.

Произвести стерилизацию биологических трансплантатов невозможно, поэтому гарантией профилактики инфицирования является соблюдение правил асептики при заборе органов или тканей.

Флегмоны (патогенез, клиника, лечение).

Острое разлитое воспаление клетчаточных пространств. В отличие от абсцесса ограничения

воспаления не происходит. Она может быть самостоятельным заболеванием, так и следствием других гнойных заболеваний (карбункул, абсцесс, сепсис).

По характеру экссудата различают: серозную, гнойную, гнойно-геморрагическую и гнилостную формы флегмоны.

По локализации: эпифасциальная и субфасциальная. При некоторых локализациях флегмона носит специальное название.

Клиника: быстро появляется и распространяется болезненная припухлость, разлитое покраснение кожи, появляется высокая температура (40°С и выше), боли, нарушение функции.

Пальпаторно определяется плотный инфильтрат (инфильтративная стадия). Затем он размягчается и появляется симптом флюктуация. Течение зачастую приобретает неблаго-приятное течение.

Лечение. В начальной фазе можно применять антибиотики, иммобилизацию, обильное питье, мелочно-растительная диета, сердечные средства, болеутоляющие. При отграничении процесса и формировании гнойников, производят их вскрытие.

При прогрессировании флегмоны показано экстренное вмешательство после кратко-

срочной подготовки. Производят широкое вскрытие, дренирование флегмоны. Затем раны рыхло тампонирую тампонами, смоченными гипертоническим раствором или КМnО4. Затем рану ведут по законам гнойной хирургии в соответствии с течением фаз раневого процесса.

Допустимо проведение полной хирургической обработки с наложением первичного шва

на гнойную рану.

Стерилизация перевязочного материала и белья

Подготовка перевязочного материала и белья к стерилизации

В последние годы очень серьезно обсуждается вопрос о применении одноразовой медицинской одежды и белья. Существует требование Минздрава РФ о переходе на одноразовую одежду для хирургического медперсонала и белье для послеоперационных больных.

Актуальность проблемы обусловлена в основном довольно высоким уровнем раневой инфекции в послеоперационном периоде, причем в большинстве случаев (85%) источником микроорганизмов является сам пациент (50% наблюдений) и медицинский персонал (35%),а также неуклонным ростом заболеваемости медицинских работников такими инфекционными заболеваниями, как вирусные гепатиты В и С, ВИЧ-инфекции. Заражение персонала происходит при контакте кожи и слизистых с различными биологическими жидкостями и тканями зараженного пациента.

Для профилактики инфицирования медицинского персонала необходима защита не только кожи, но и всего тела, а хирургическое белье (операционные материалы), предназначенное для обеспечения стерильности операционного поля, не должно допускать проникновения микроорганизмов в рану. Медицинская одежда и белье не отвечают этим требованиям.



Барьерные возможности хлопчатобумажного операционного белья крайне ограничены. Оно выделяет текстильную пыль и мелкие ворсинки, которые, пропитываясь биологическими жидкостями, становятся хорошей средой для переноса и размножения микроорганизмов, причем многократные обработки приводят к еще большему разволокнению ткани. Одноразовое хирургическое белье (Рис. 31) лишено этих недостатков. Тем не менее, уровень обеспечения медицинской одеждой и бельем одноразового использования, по данным экспертов, в России составляет всего 0,32%.

К операционному белью относятся медицинские халаты, застегивающиеся сзади, простыни, полотенца, салфетки, колпачки и маски.

Перевязочный материал, который используется в операционной и при перевязках – это белая гигроскопическая марля и вата.

Марлю складывают квадратами длиной 1 м и шириной 70 - 80 см. Из нее готовят салфетки - большие, средние и малые. Из одного куска марли можно сделать 2 больших, 4 средних и 6 малых салфеток. При изготовлении салфеток края всех отрезанных кусков обязательно загибаются внутрь на 2 см, складывают пополам вдоль поперечной, а затем и продольной нити. Салфетки используют для защиты кожи, осушения раны, наложения повязок.

Для остановки кровотечения, удаления крови и гноя применяют тампоны большие, средние и малые. Самые узкие из них - турунды.

Большой тампон готовится из большой салфетки с загнутыми краями, которая дважды складывается пополам. Затем по длине она складывается так, чтобы одна половина была длиннее другой.

Образовавшуюся полоску складывают еще раз - пополам и выступающий край заворачивают на тампон.

Средний тампон делается из средней салфетки Для его изготовления заворачивают край марли на 3-5 см, складывают поперек, а затем вдоль..

Малый тампон начинают готовить с подворачивания на 1 - 2 см одного из коротких краев марли, затем подворачивают внутрь с некоторым заходом друг на друга более длинные края с повторным складыванием их пополам в продольном и в поперечном направлениях.

Турунды готовятся из полосок марли или бинта шириной 5 см и длиной до 40 - 50 см. Конец бинта заворачивают внутрь, а края складывают навстречу друг другу до соприкосновения. Для образования ровного края сложенную полоску в натянутом состоянии прокатывают через край стола, затем её складывают еще раз и вновь протягивают через край стола. Полученную полоску наматывают на три пальца, а свободный край подворачивают внутрь образовавшегося кольца.

Для осушивания ран от крови и гноя применяют марлевые шарики, которые готовятся из кусочков марли 12 х 12 см. Их загибают к середине, обертывают вокруг пальца и протаскивают свободный конец в середину образовавшейся трубочки. Они укладываются в марлевые мешочки по 50-100 штук.

Вата готовится в виде кусков размером 33 х 20 см или в виде лент шириной 30 см и длиной до 1,5 метров, свернутых рулоном. Из гигроскопической ваты иногда готовят ватные тупферы путем наматывания кусочка ваты на деревянную палочку длиной 15- 20 см. В настоящее время они применяются редко.

Укладка перевязочного материала и операционного белья в биксы для стерилизации

Существуют следующие виды укладки материала в биксы.

Универсальная (секторальная) укладка используется в хирургических отделениях небольших больниц. В один бикс укладываются все материалы, необходимые для выполнения типичных операций, чаще экстренных, таких как аппендэктомия, грыжесечение и т. п. (простыни, халаты, перевязочный материал и т. д.), причем стерилизационная емкость разделяется на сектора; в каждый из них закладываются разные виды изделий и по одному внутреннему индикатору ИКПС-ВН/01 в укладку каждого сектора.

Специализированная (видовая) укладка используется для операционных с большим объемом работы. В каждый из биксов укладывается только один вид материала - в один бикс только халаты, в другой – простыни и т. д.

При стерилизации пористых изделий (простыни, халаты и т. п.) в стерилизационную коробку закладывается не менее 3 индикаторов ИКПС-ВН/01 «Медтест», размещая в середине стерилизуемых изделий. При стерилизации перчаток индикаторы размещаются в ладонной части внутри перчатки. В других резиновых изделиях индикаторы размещаются по мере возможности, но так, чтобы они легко удалялись.

При стерилизации изделий из стекла или металла индикаторы закрепляются на внутренней стороне упаковки.

Целенаправленная укладка используется для выполнения, конкретно, какой либо одной из больших плановых операций, например, укладывается весь материал, необходимый для пульмонэктомии, резекции желудка и т.п. В каждый вид закладки помещается внутрь по 1 внутреннему индикатору, причем в закладках одной стерилизационной коробки должно быть не менее 3 индикаторов, один из которых расположен в центральной закладке и 2 в боковых, близких к стенкам стерилизационной коробки.

Перед укладкой медицинская сестра должна проверить целость белья и соответствующим образом сложить его. Халаты складываются рукавами внутрь и не туго скатываются в рулон. Простыни загибают по краям на 50 см, затем складывают вчетверо вдоль и не туго скатывают, начиная с не загнутого конца.

Полотенца и салфетки складывают вчетверо.

Укладка белья в биксы производится так, чтобы каждую вещь, каждый пакет или пачку можно было взять отдельно, не трогая остальные.

Дно и стенки бикса выстилают простыней, концы которой размещаются снаружи. Аккуратно сложенное белье укладывают секторально в вертикальном положении умеренно плотно, руководствуясь правилом «…если между вертикально уложенными слоями белья свободно проходит кисть руки, белье уложено правильно».

Материал укладывают рыхло, чтобы обеспечить свободное прохождение пара. После того как бикс заполнен, края выстилающей его простыни подгибаются внутрь.

Стерилизация перевязочного материала и белья осуществляется в автоклаве. Режим стерилизации: давление 2 а, температура – 132,9 о С, время стерилизации 30 мин.